Fig. 1. Protection matt over the scour pit.

그물형 세굴방지매트를 사용한 수직말뚝의 흐름에 대한 수치적 연구

Numerical study of the flow at a vertical pile with net-like scour protection matt
Minxi Zhanga,b
, Hanyan Zhaoc
, Dongliang Zhao d, Shaolin Yuee
, Huan Zhoue
,
Xudong Zhaoa
, Carlo Gualtierif
, Guoliang Yua,b,∗
a SKLOE, School of Naval Architecture, Ocean & Civil Engineering, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200240, China b KLMIES, MOE, School of Naval Architecture, Ocean & Civil Engineering, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200240, China c Guangdong Research Institute of Water Resources and Hydropower, Guangzhou 510610, China d CCCC Second Harbor Engineering Co., Ltd., Wuhan 430040, China e CCCC Road & Bridge Special Engineering Co., Ltd, Wuhan 430071, China f Department of Structures for Engineering and Architecture, University of Naples Federico II, Italy

Abstract

현재 또는 파도 환경에서 말뚝 또는 부두의 국부 세굴은 전 세계적으로 상부 구조물의 안전을 위협합니다. 말뚝이나 부두에서 세굴 방지 덮개로 그물 모양의 매트를 적용하는 것이 제안되었습니다. 매트는 국부 세굴 구덩이의 흐름을 약화 및 확산시켜 국부 세굴을 줄이고 퇴적물 퇴적을 강화합니다. 매트로 덮힌 말뚝의 흐름을 조사하기 위해 수치 시뮬레이션을 수행했습니다. 시뮬레이션 결과는 매트의 두께 dt(2.6d95 ~ 17.9d95)와 개구부 크기 dn(7.7d95 ~ 28.2d95)을 최적화하는 데 사용되었습니다. 매트가 국부 속도를 상당히 감소시키고 말뚝에서 와류를 소멸시켜 국부 세굴 범위를 실질적으로 감소시키는 것으로 밝혀졌습니다. 매트의 개구부 크기가 작을수록 베드에서의 유동확산이 더 효과적이었으며 말뚝에서 더 작은 베드전단응력이 관찰되었다. 본 연구에서 고려한 유동 조건의 경우 상대 두께 T = 7.7 및 상대 개구 크기 S = 7.7인 매트가 세굴 방지에 효과적일 수 있습니다.

Fig. 1. Protection matt over the scour pit.
Fig. 26. Distribution of the turbulent kinetic energy on the y-z plane (X = 0.5) for various S
Fig. 26. Distribution of the turbulent kinetic energy on the y-z plane (X = 0.5) for various S

References

[1] C. He, Mod. Transp. Technol. 17 (3) (2020) 46–59 in Chinese.
[2] X. Wen, D. Zhang, J. Tianjin Univ. 54 (10) (2021) 998–1007 (Science and Technology)in Chinese.
[3] M. Zhang, H. Sun, W. Yao, G. Yu, Ocean Eng. 265 (2020) 112652, doi:10.1016/j.
oceaneng.2022.112652.
[4] K. Wardhana, F.C. Hadipriono, J. Perform. Constr. Fac. 17 (3) (2003) 144–150,
doi:10.1061/(ASCE)0887-3828(2003)17:3(144).
[5] R. Ettema, G. Constantinescu, B.W. Melville, J. Hydraul. Eng. 143 (9) (2017)
03117006, doi:10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0001330.
[6] C. Valela, C.D. Rennie, I. Nistor, Int. J. Sediment Res. 37 (1) (2021) 37–46,
doi:10.1016/j.ijsrc.2021.04.004.
[7] B.W. Melville, A.J. Sutherland, J. Hydraul. Eng. 114 (10) (1988) 1210–1226,
doi:10.1061/(ASCE)0733-9429(1988)114:10(1210).
[8] E.V. Richardson, S.R. Davis, Evaluating Scour At Bridges, 4th ed., United States
Department of Transportation, Federal Highway Administration, Washington,
DC., 2001.
[9] D.M. Sheppard, B. Melville, H. Demir, J. Hydraul. Eng. 140 (1) (2014) 14–23,
doi:10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0000800.
[10] A.O. Aksoy, G. Bombar, T. Arkis, M.S. Guney, J. Hydrol. Hydromech. 65 (1)
(2017) 26–34.
[11] D.T. Bui, A. Shirzadi, A. Amini, et al., Sustainability 12 (3) (2020) 1063, doi:10.
3390/su12031063.
[12] B.M. Sumer, J. Fredsoe, The Mechanics of Scour in Marine Environments. World
Advanced Series on Ocean Engineering, 17, World Scientific, Singapore, 2002.
[13] J. Unger, W.H. Hager, Exp. Fluids 42 (1) (2007) 1–19.
[14] G. Kirkil, S.G. Constantinescu, R. Ettema, J. Hydraul. Eng. 134 (5) (2008) 82–84,
doi:10.1061/(ASCE)0733-9429(2008)134:5(572).
[15] B. Dargahi, J. Hydraul. Eng. 116 (10) (1990) 1197–1214.
[16] A. Bestawy, T. Eltahawy, A. Alsaluli, M. Alqurashi, Water Supply 20 (3) (2020)
1006–1015, doi:10.2166/ws.2020.022.
[17] Y.M. Chiew, J. Hydraul. Eng. 118 (9) (1992) 1260–1269.
[18] D. Bertoldi, R. Kilgore, in: Hydraulic Engineering ’93, ASCE, San Francisco, California, United States, 1993, pp. 1385–1390.
[19] Y.M. Chiew, J. Hydraul. Eng. 121 (9) (1997) 635–642.
[20] C.S. Lauchlan, B.W. Melville, J. Hydraul. Eng. 127 (5) (2001) 412–418, doi:10.
1061/(ASCE)0733-9429(2001)127:5(412).
[21] P.F. Lagasse, P.E. Clopper, L.W. Zevenbergen, L.G. Girard, National Cooperative
Highway Research Program (NCHRPReport 593), Countermeasures to protect
bridge piers from scour, Washington, DC, NCHRP, 2007.
[22] S. Jiang, Z. Zhou, J. Ou, J. Sediment Res. (4) (2013) 63–67 in Chinese.
[23] A. Galan, G. Simarro, G. Sanchez-Serrano, J. Hydraul. Eng. 141 (6) (2015)
06015004, doi:10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0001003.
[24] Z. Zhang, H. Ding, J. Liu, Ocean Eng. 33 (2) (2015) 77–83 in Chinese.
[25] C. Valela, C.N. Whittaker, C.D. Rennie, I. Nistor, B.W. Melville, J. Hydraul. Eng.
148 (3) (2022) 04022002 10.1061/%28ASCE%29HY.1943-7900.0001967.
[26] B.W. Melville, A.C. Hadfield, J. Hydraul. Eng. 6 (2) (1999) 1221–1224, doi:10.
1061/(ASCE)0733-9429(1999)125:11(1221).
[27] V. Kumar, K.G. Rangaraju, N. Vittal, J. Hydraul. Eng. 125 (12) (1999) 1302–1305.
[28] A.M. Yasser, K.S. Yasser, M.A. Abdel-Azim, Alex. Eng. J. 54 (2) (2015) 197–203,
doi:10.1016/j.aej.2015.03.004.
[29] S. Khaple, P.R. Hanmaiahgari, R. Gaudio, S. Dey, Acta Geophys. 65 (2017) 957–
975, doi:10.1007/s11600-017-0084-z.
[30] C. Valela, I. Nistor, C.D. Rennie, in: Proceedings of the 6th International Disaster Mitigation Specialty Conference, Fredericton, Canada, Canadian Society for
Civil Engineering, 2018, pp. 235–244.
[31] A. Tafarojnoruz, R. Gaudio, F. Calomino, J. Hydraul. Eng. 138 (3) (2012) 297–
305, doi:10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0000512.
[32] H. Tang, S. Fang, Y. Zhou, K. Cai, Y.M. Chiew, S.Y. Lim, N.S. Cheng, in: Proceedings of the 2nd International Conference Scour and Erosion (ICSE-2), Singapore.
Singapore, Nanyang Technological University, 2004.
[33] W. Zhang, Y. Li, X. Wang, Z. Sun, J. Sichuan Univ. 06 (2005) 34–40 (Engineering
Science Edition)in Chinese.
[34] S. Yang, B. Shi, Trans. Oceanol. Limnol. 5 (2017) 43–47 in Chinese.
[35] H. Wang, F. Si, G. Lou, W. Yang, G. Yu, J. Waterw. Port Coast. Ocean Eng. 141
(1) (2015) 04014030, doi:10.1061/(ASCE)WW.1943-5460.0000270.
[36] L.D. Meyer, S.M. Dabney, W.C. Harmon, Trans. ASAE 38 (3) (1995) 809–815.
[37] G. Spyreas, B.W. Wilm, A.E. Plocher, D.M. Ketzner, J.W. Matthews, J.L. Ellis, E.J. Heske, Biol. Invasions 12 (5) (2010) 1253–1267, doi:10.1007/
s10530-009-9544-y.
[38] T. Lambrechts, S. François, S. Lutts, R. Muñoz-Carpena, C.L. Bielders, J. Hydrol.
511 (2014) 800–810, doi:10.1016/j.jhydrol.2014.02.030.
[39] G. Yu, Dynamic Embedded Anchor with High Frequency Micro Amplitude Vibrations. CN patent No: ZL200810038546.0, 2008.
[40] X. Chen, M. Zhang, G. Yu, Ocean Eng. 236 (2021) 109315, doi:10.1016/j.
oceaneng.2021.109315.
[41] F. Gumgum, M.S. Guney, in: Proceedings of the 6th International Conference
Engineering and Natural Sciences (ICENS), Serbia, Belgrade, 2020.
[42] H. Zhao, S. Yue, H. Zhou, M. Zhang, G. Yu, Ocean Eng. 40 (5) (2022) 111–120
in Chinese.
[43] B. Blocken, C. Gualtieri, Environ. Modell. Softw. 33 (2012) 1–22, doi:10.1016/j.
envsoft.2012.02.001.
[44] N.D. Bennett, B.F. Croke, G. Guariso, et al., Modell. Softw. 40 (2013) 1–20,
doi:10.1016/j.envsoft.2012.09.011.
[45] X. Zhao, Effectiveness and Mechanism of Lattice On Sedimentation and Anti-Erosion of Local Scour Hole At Piers, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai, China, 2023.
[46] M. Zhang, G. Yu, Water Resour. Res. 53 (9) (2017) 7798–7815, doi:10.1002/
2017WR021066.

Fig. 8. Variation of water surface profile (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.

Numerical study of the dam-break waves and Favre waves down sloped wet rigid-bed at laboratory scale

WenjunLiuaBoWangaYakunGuobaState Key Laboratory of Hydraulics and Mountain River Engineering, College of Water Resource and Hydropower, Sichuan University, Chengdu 610065, ChinabFaculty of Engineering & Informatics, University of Bradford, BD7 1DP, UK

Highlights

경사진 습윤층에서 댐파괴유동과 FFavre 파를 수치적으로 조사하였다.
수직 대 수평 속도의 비율이 먼저 정량화됩니다.
유동 상태는 유상 경사가 큰 후기 단계에서 크게 변경됩니다.
Favre 파도는 수직 속도와 수직 가속도에 큰 영향을 미칩니다.
베드 전단응력의 변화는 베드 기울기와 꼬리물의 영향을 받습니다.

Abstract

The bed slope and the tailwater depth are two important ones among the factors that affect the propagation of the dam-break flood and Favre waves. Most previous studies have only focused on the macroscopic characteristics of the dam-break flows or Favre waves under the condition of horizontal bed, rather than the internal movement characteristics in sloped channel. The present study applies two numerical models, namely, large eddy simulation (LES) and shallow water equations (SWEs) models embedded in the CFD software package FLOW-3D to analyze the internal movement characteristics of the dam-break flows and Favre waves, such as water level, the velocity distribution, the fluid particles acceleration and the bed shear stress, under the different bed slopes and water depth ratios. The results under the conditions considered in this study show that there is a flow state transition in the flow evolution for the steep bed slope even in water depth ratio α = 0.1 (α is the ratio of the tailwater depth to the reservoir water depth). The flow state transition shows that the wavefront changes from a breaking state to undular. Such flow transition is not observed for the horizontal slope and mild bed slope. The existence of the Favre waves leads to a significant increase of the vertical velocity and the vertical acceleration. In this situation, the SWEs model has poor prediction. Analysis reveals that the variation of the maximum bed shear stress is affected by both the bed slope and tailwater depth. Under the same bed slope (e.g., S0 = 0.02), the maximum bed shear stress position develops downstream of the dam when α = 0.1, while it develops towards the end of the reservoir when α = 0.7. For the same water depth ratio (e.g., α = 0.7), the maximum bed shear stress position always locates within the reservoir at S0 = 0.02, while it appears in the downstream of the dam for S0 = 0 and 0.003 after the flow evolves for a while. The comparison between the numerical simulation and experimental measurements shows that the LES model can predict the internal movement characteristics with satisfactory accuracy. This study improves the understanding of the effect of both the bed slope and the tailwater depth on the internal movement characteristics of the dam-break flows and Favre waves, which also provides a valuable reference for determining the flood embankment height and designing the channel bed anti-scouring facility.

Fig. 1. Sketch of related variables involved in shallow water model.
Fig. 1. Sketch of related variables involved in shallow water model.
Fig. 2. Flume model in numerical simulation.
Fig. 2. Flume model in numerical simulation.
Fig. 3. Grid sensitivity analysis (a) water surface profile; (b) velocity profile.
Fig. 3. Grid sensitivity analysis (a) water surface profile; (b) velocity profile.
Fig. 4. Sketch of experimental set-up for validating the velocity profile.
Fig. 4. Sketch of experimental set-up for validating the velocity profile.
Fig. 5. Sketch of experimental set-up for validating the bed shear stress.
Fig. 5. Sketch of experimental set-up for validating the bed shear stress.
Fig. 6. Model validation results (a) variation of the velocity profile; (b) error value of the velocity profile; (c) variation of the bed shear stress; (d) error value of the bed shear stress.
Fig. 6. Model validation results (a) variation of the velocity profile; (b) error value of the velocity profile; (c) variation of the bed shear stress; (d) error value of the bed shear stress.
Fig. 7. Schematic diagram of regional division.
Fig. 7. Schematic diagram of regional division.
Fig. 8. Variation of water surface profile (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 8. Variation of water surface profile (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 8. (continued).
Fig. 8. (continued).
Fig. 8. (continued).
Fig. 8. (continued).
Fig. 8. (continued).
Fig. 8. (continued).
Fig. 9. Froude number for α = 0.1 (a) variation with time; (b) variation with wavefront position.
Fig. 9. Froude number for α = 0.1 (a) variation with time; (b) variation with wavefront position.
Fig. 10. Characteristics of velocity distribution (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 10. Characteristics of velocity distribution (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 11. Average proportion of the vertical velocity (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 11. Average proportion of the vertical velocity (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 12. Bed shear stress distribution (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 12. Bed shear stress distribution (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 12. (continued).
Fig. 12. (continued).
Fig. 13. Variation of the maximum bed shear stress position with time (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 13. Variation of the maximum bed shear stress position with time (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 14. Time when the maximum bed shear stress appears at different positions (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 14. Time when the maximum bed shear stress appears at different positions (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 15. Movement characteristics of the fluid particles (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 15. Movement characteristics of the fluid particles (a) α = 0.1; (b) α = 0.3; (c) α = 0.5; (d) α = 0.7.
Fig. 15. (continued).
Fig. 15. (continued).

Keywords

Dam-break flow, Bed slope, Wet bed, Velocity profile, Bed shear stress, Large eddy simulation

References

Barnes, M.P., Baldock, T.E. 2006. Bed shear stress measurements in dam break and swash
flows. Proceedings of International Conference on Civil and Environmental
Engineering. Hiroshima University, Japan, 28–29 September.
Biscarini, C., Francesco, S.D., Manciola, P., 2010. CFD modelling approach for dam break
flow studies. Hydrol. Earth Syst. Sc. 14, 705–718. https://doi.org/10.5194/hess-14-
705-2010.
Fig. 15. (continued).
W. Liu et al.
Journal of Hydrology 602 (2021) 126752
19
Bristeau, M.-O., Goutal, N., Sainte-Marie, J., 2011. Numerical simulations of a nonhydrostatic shallow water model. Comput. Fluids. 47 (1), 51–64. https://doi.org/
10.1016/j.compfluid.2011.02.013.
Bung, D.B., Hildebrandt, A., Oertel, M., Schlenkhoff, A., Schlurmann, T. 2008. Bore
propagation over a submerged horizontal plate by physical and numerical
simulation. Proc. 31st Intl.Conf. Coastal Eng., Hamburg, Germany, 3542–3553.
Cantero-Chinchilla, F.N., Castro-Orgaz, O., Dey, S., Ayuso, J.L., 2016. Nonhydrostatic
dam break flows. I: physical equations and numerical schemes. J. Hydraul. Eng. 142
(12), 04016068. https://doi.org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0001205.
Castro-Orgaz, O., Chanson, H., 2020. Undular and broken surges in dam-break flows: A
review of wave breaking strategies in a boussinesq-type framework. Environ. Fluid
Mech. 154 https://doi.org/10.1007/s10652-020-09749-3.
Chang, T.-J., Kao, H.-M., Chang, K.-H., Hsu, M.-H., 2011. Numerical simulation of
shallow-water dam break flows in open channels using smoothed particle
hydrodynamics. J. Hydrol. 408 (1-2), 78–90. https://doi.org/10.1016/j.
jhydrol.2011.07.023.
Chen, H., Xu, W., Deng, J., Xue, Y., Li, J., 2009. Experimental investigation of pressure
load exerted on a downstream dam by dam-break flow. J. Hydraul. Eng. 140,
199–207. https://doi.org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0000743.
Favre H. 1935. Etude th´eorique et exp´erimentale des ondes de translation dans les
canaux d´ecouverts. Dunod, Paris. (in French).
Flow Science Inc. 2016. Flow-3D User’s Manuals. Santa Fe NM.
Fraccarollo, L., Toro, E.F., 1995. Experimental and numerical assessment of the shallow
water model for two-dimensional dam-break type problems. J. Hydraul. Res. 33 (6),
843–864. https://doi.org/10.1080/00221689509498555.
Guo, Y., Wu, X., Pan, C., Zhang, J., 2012. Numerical simulation of the tidal flow and
suspended sediment transport in the qiantang estuary. J Waterw. Port Coastal. 138
(3), 192–202. https://doi.org/10.1061/(ASCE)WW.1943-5460.0000118.
Guo, Y., Zhang, Z., Shi, B., 2014. Numerical simulation of gravity current descending a
slope into a linearly stratified environment. J. Hydraulic Eng. 140 (12), 04014061.
https://doi.org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0000936.
Khosronejad, A., Kang, S., Flora, K., 2019. Fully coupled free-surface flow and sediment
transport modelling of flash floods in a desert stream in the mojave desert, california.
Hydrol. Process 33 (21), 2772–2791. https://doi.org/10.1002/hyp.v33.2110.1002/
hyp.13527.
Khosronejad, A., Arabi, M.G., Angelidis, D., Bagherizadeh, E., Flora, K., Farhadzadeh, A.,
2020a. A comparative study of rigid-lid and level-set methods for LES of openchannel flows: morphodynamics. Environ. Fluid Mech. 20 (1), 145–164. https://doi.
org/10.1007/s10652-019-09703-y.
Khosronejad, A., Flora, K., Zhang, Z.X., Kang, S., 2020b. Large-eddy simulation of flash
flood propagation and sediment transport in a dry-bed desert stream. Int. J.
Sediment Res. 35 (6), 576–586. https://doi.org/10.1016/j.ijsrc.2020.02.002.
Khoshkonesh, A., Nsom, B., Gohari, S., Banejad, H., 2019. A comprehensive study of dam
break over the dry and wet beds. Ocean Eng. 188, 106279.1–106279.18. https://doi.
org/10.1016/j.oceaneng.2019.106279.
Kocaman, S., Ozmen-Cagatay, H., 2012. The effect of lateral channel contraction on dam
break flows: laboratory experiment. J. Hydrol. 432–433, 145–153. https://doi.org/
10.1016/j.jhydrol.2012.02.035.
Kocaman, S., Ozmen-Cagatay, H., 2015. Investigation of dam-break induced shock waves
impact on a vertical wall. J. Hydrol. 525, 1–12. https://doi.org/10.1016/j.
jhydrol.2015.03.040.
LaRocque, L.A., Imran, J., Chaudhry, M.H., 2013a. Experimental and numerical
investigations of two-dimensional dam-break flows. J. Hydraul. Eng. 139 (6),
569–579. https://doi.org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0000705.
Larocque, L.A., Imran, J., Chaudhry, M.H., 2013b. 3D numerical simulation of partial
breach dam-break flow using the LES and k-ε turbulence models. J. Hydraul. Res. 51,
145–157. https://doi.org/10.1080/00221686.2012.734862.
Lauber, G., Hager, W.H., 1998a. Experiments to dam break wave: Horizontal channel.
J. Hydraul. Res. 36 (3), 291–307. https://doi.org/10.1080/00221689809498620.
Lauber, G., Hager, W.H., 1998b. Experiments to dam break wave: Sloping channel.
J. Hydraul. Res. 36 (5), 761–773. https://doi.org/10.1080/00221689809498601.
Leal, J.G., Ferreira, R.M., Cardoso, A.H., 2006. Dam-break wave-front celerity.
J. Hydraul. Eng. 132 (1), 69–76. https://doi.org/10.1061/(ASCE)0733-9429(2006)
132:1(69).
Liu, W., Wang, B., Guo, Y., Zhang, J., Chen, Y., 2020. Experimental investigation on the
effects of bed slope and tailwater on dam-break flows. J. Hydrol. 590, 125256.
https://doi.org/10.1016/j.jhydrol.2020.125256.
Marche, C., Beauchemin P. EL Kayloubi, A. 1995. Etude num´erique et exp´erimentale des
ondes secondaires de Favre cons´ecutives a la rupture d’un harrage. Can. J. Civil Eng.
22, 793–801, (in French). https://doi.org/10.1139/l95-089.
Marra, D., Earl, T., Ancey, C. 2011. Experimental investigations of dam break flows down
an inclined channel. Proceedings of the 34th World Congress of the International
Association for Hydro-Environment Research and Engineering: 33rd Hydrology and
Water Resources Symposium and 10th Conference on Hydraulics in Water
Engineering, Brisbane, Australia.
Marsooli, R., Wu, W., 2014. 3-D finite-volume model of dam-break flow over uneven
beds based on vof method. Adv. Water Resour. 70, 104–117. https://doi.org/
10.1016/j.advwatres.2014.04.020.
Miller, S., Chaudhry, M.H., 1989. Dam-break flows in curved channel. J. Hydraul. Eng.
115 (11), 1465–1478. https://doi.org/10.1061/(ASCE)0733-9429(1989)115:11
(1465).
Mohapatra, P.K., Chaudhry, M.H., 2004. Numerical solution of Boussinesq equations to
simulate dam-break flows. J. Hydraul. Eng. 130 (2), 156–159. https://doi.org/
10.1061/(ASCE)0733-9429(2004)130:2(156).
Oertel, M., Bung, D.B., 2012. Initial stage of two-dimensional dam-break waves:
laboratory versus VOF. J. Hydraul. Res. 50 (1), 89–97. https://doi.org/10.1080/
00221686.2011.639981.
Ozmen-Cagatay, H., Kocaman, S., 2012. Investigation of dam-break flow over abruptly
contracting channel with trapezoidal-shaped lateral obstacles. J. Fluids Eng. 134,
081204 https://doi.org/10.1115/1.4007154.
Ozmen-Cagatay, H., Kocaman, S., Guzel, H., 2014. Investigation of dam-break flood
waves in a dry channel with a hump. J. Hydro-environ. Res. 8 (3), 304–315. https://
doi.org/10.1016/j.jher.2014.01.005.
Park, I.R., Kim, K.S., Kim, J., Van, S.H., 2012. Numerical investigation of the effects of
turbulence intensity on dam-break flows. Ocean Eng. 42, 176–187. https://doi.org/
10.1016/j.oceaneng.2012.01.005.
Peregrine, D.H., 1966. Calculations of the development of an undular bore. J. Fluid
Mech. 25 (2), 321–330. https://doi.org/10.1017/S0022112066001678.
Savic, L.j., Holly, F.M., 1993. Dam break flood waves computed by modified Godunov
method. J. Hydraul. Res. 31 (2), 187–204. https://doi.org/10.1080/
00221689309498844.
Shigematsu, T., Liu, P., Oda, K., 2004. Numerical modeling of the initial stages of dambreak waves. J. Hydraul. Res. 42 (2), 183–195. https://doi.org/10.1080/
00221686.2004.9628303.
Smagorinsky, J., 1963. General circulation experiments with the primitive equations.
Part I: the basic experiment. Mon. Weather Rev. 91, 99–164. https://doi.org/
10.1126/science.27.693.594.
Soares-Frazao, S., Zech, Y., 2002. Undular bores and secondary waves – Experiments and
hybrid finite-volume modeling. J. Hydraul. Res. 40, 33–43. https://doi.org/
10.1080/00221680209499871.
Stansby, P.K., Chegini, A., Barnes, T.C.D., 1998. The initial stages of dam-break flow.
J. Fluid Mech. 370, 203–220. https://doi.org/10.1017/022112098001918.
Treske, A., 1994. Undular bores (favre-waves) in open channels – experimental studies.
J. Hydraul. Res. 32 (3), 355–370. https://doi.org/10.1080/00221689409498738.
Wang, B., Chen, Y., Wu, C., Dong, J., Ma, X., Song, J., 2016. A semi-analytical approach
for predicting peak discharge of floods caused by embankment dam failures. Hydrol.
Process 30 (20), 3682–3691. https://doi.org/10.1002/hyp.v30.2010.1002/
hyp.10896.
Wang, B., Chen, Y., Wu, C., Peng, Y., Ma, X., Song, J., 2017. Analytical solution of dambreak flood wave propagation in a dry sloped channel with an irregular-shaped
cross-section. J. Hydro-environ. Res. 14, 93–104. https://doi.org/10.1016/j.
jher.2016.11.003.
Wang, B., Chen, Y., Wu, C., Peng, Y., Song, J., Liu, W., Liu, X., 2018. Empirical and semianalytical models for predicting peak outflows caused by embankment dam failures.
J. Hydrol. 562, 692–702. https://doi.org/10.1016/j.jhydrol.2018.05.049.
Wang, B., Zhang, J., Chen, Y., Peng, Y., Liu, X., Liu, W., 2019. Comparison of measured
dam-break flood waves in triangular and rectangular channels. J. Hydrol. 575,
690–703. https://doi.org/10.1016/j.jhydrol.2019.05.081.
Wang, B., Liu, W., Zhang, J., Chen, Y., Wu, C., Peng, Y., Wu, Z., Liu, X., Yang, S., 2020a.
Enhancement of semi-theoretical models for predicting peak discharges in breached
embankment dams. Environ. Fluid Mech. 20 (4), 885–904. https://doi.org/10.1007/
s10652-019-09730-9.
Wang, B., Chen, Y., Peng, Y., Zhang, J., Guo, Y., 2020b. Analytical solution of shallow
water equations for ideal dam-break flood along a wet bed slope. J. Hydraul. Eng.
146 (2), 06019020. https://doi.org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0001683.
Wang, B., Liu, W., Wang, W., Zhang, J., Chen, Y., Peng, Y., Liu, X., Yang, S., 2020c.
Experimental and numerical investigations of similarity for dam-break flows on wet
bed. J. Hydrol. 583, 124598. https://doi.org/10.1016/j.jhydrol.2020.124598.
Wang, B., Liu, X., Zhang, J., Guo, Y., Chen, Y., Peng, Y., Liu, W., Yang, S., Zhang, F.,
2020d. Analytical and experimental investigations of dam-break flows in triangular
channels with wet-bed conditions. J. Hydraul. Eng. 146 (10), 04020070. https://doi.
org/10.1061/(ASCE)HY.1943-7900.0001808.
Wu, W., Wang, S., 2007. One-dimensional modeling of dam-break flow over movable
beds. J. Hydraul. Eng. 133 (1), 48–58. https://doi.org/10.1061/(ASCE)0733-9429
(2007)133:1(48).
Xia, J., Lin, B., Falconer, R.A., Wang, G., 2010. Modelling dam-break flows over mobile
beds using a 2d coupled approach. Adv. Water Resour. 33 (2), 171–183. https://doi.
org/10.1016/j.advwatres.2009.11.004.
Yang, S., Yang, W., Qin, S., Li, Q., Yang, B., 2018a. Numerical study on characteristics of
dam-break wave. Ocean Eng. 159, 358–371. https://doi.org/10.1016/j.
oceaneng.2018.04.011.
Yang, S., Yang, W., Qin, S., Li, Q., 2018b. Comparative study on calculation methods of
dam-break wave. J. Hydraul. Res. 57 (5), 702–714. https://doi.org/10.1080/
00221686.2018.1494057.

Flow Field in a Sloped Channel with Damaged and Undamaged Piers: Numerical and Experimental Studies

Flow Field in a Sloped Channel with Damaged and Undamaged Piers: Numerical and Experimental Studies

Ehsan OveiciOmid Tayari & Navid Jalalkamali
KSCE Journal of Civil Engineering volume 25, pages4240–4251 (2021)Cite this article

Abstract

본 논문은 경사가 완만한 수로에서 손상되거나 손상되지 않은 교각 주변의 유동 패턴을 분석했습니다. 실험은 길이가 12m이고 기울기가 0.008인 직선 수로에서 수행되었습니다. Acoustic Doppler Velocimeter(ADV)를 이용하여 3차원 유속 데이터를 수집하였고, 그 결과를 PIV(Particle Image Velocimetry) 데이터와 분석하여 비교하였습니다.

다중 블록 옵션이 있는 취수구의 퇴적물 시뮬레이션(SSIIM)은 이 연구에서 흐름의 수치 시뮬레이션을 위해 통합되었습니다. 일반적으로 비교에서 얻은 결과는 수치 데이터와 실험 데이터 간의 적절한 일치를 나타냅니다. 결과는 모든 경우에 수로 입구에서 2m 거리에서 기복적 수압 점프가 발생했음을 보여주었습니다.

경사진 수로의 최대 베드 전단응력은 2개의 손상 및 손상되지 않은 교각을 설치하기 위한 수평 수로의 12배였습니다. 이와 같은 경사수로 교각의 위치에 따라 상류측 수위는 수평수로의 유사한 조건에 비해 72.5% 감소한 반면, 이 감소량은 경사면에서 다른 경우에 비해 8.3% 감소하였다. 채널 또한 두 교각이 있는 경우 최대 Froude 수는 수평 수로의 5.7배였습니다.

This paper analyzed the flow pattern around damaged and undamaged bridge piers in a channel with a mild slope. The experiments were carried out on a straight channel with a length of 12 meters and a slope of 0.008. Acoustic Doppler velocimeter (ADV) was employed to collect three-dimensional flow velocity data, and the results were analyzed and compared with particle image velocimetry (PIV) data. Sediment Simulation in Intakes with Multiblock option (SSIIM) was incorporated for the numerical simulation of the flow in this study. Generally, the results obtained from the comparisons referred to the appropriate agreement between the numerical and the experimental data. The results showed that an undular hydraulic jump occurred at a distance of two meters from the channel entrance in every case; the maximum bed shear stress in the sloped channel was 12 times that in a horizontal channel for installing two damaged and undamaged piers. With this position of the piers in the sloped channel, the upstream water level underwent a 72.5% reduction compared to similar conditions in a horizontal channel, while the amount of this water level decrease was equal to 8.3% compared to the other cases in a sloped channel. In addition, with the presence of both piers, the maximum Froude number was 5.7 times that in a horizontal channel.

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References

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Figure 16: Velocity Vectors of Flow at Ghulmet

댐 붕괴 홍수파 및 범람 매핑 시뮬레이션: A
아타바드 호수 사례 연구

Simulation of Dam-Break Flood Wave and Inundation Mapping: A
Case study of Attabad Lake

Wasim Karam1, Fayaz A. Khan2, Muhammad Alam3, Sajjad Ali4
1Lab. Engineer, Department of Civil Engineering, University of Engineering and Technology Mardan, Pakistan,
wasim10karam@gmail.com
2Assistant Professor, National Institute of Urban Infrastructure Planning, University of Engineering and Technology Peshawar,
Pakistan, fayazuet@yahoo.com
3,4Assistant Professor, Department of Civil Engineering, University of Engineering and Technology Mardan, Pakistan,
emalam82@gmail.com, sajjadali@uetmardan.edu.pk

ABSTRACT

산사태 또는 제방 댐의 파손 연구는 구성이 불확실하고 자연적이며 재해에 대해 적절하게 설계되지 않았기 때문에 다른 자연적 사건에 대한 대응 지식이 부족하기 때문에 더 중요합니다. 이 논문은 댐 ​​파괴의 수력학적 모델링의 다양한 방법을 개선하는 것을 목표로 합니다.

현재 이 연구에서 Attabad 호수의 댐 붕괴는 전산 유체 역학 기술을 사용하여 시뮬레이션됩니다. 수치 모델(FLOW-3D)은 Reynolds 평균 Navier-Stoke 방정식을 완전히 3D로 풀어서 다양한 단면에서의 피크 유량 깊이, 피크 속도, 피크 방전, 피크 깊이까지의 시간 및 피크 방전까지의 시간을 예측하기 위해 개발되었습니다.

표준 RNG 난류 모델을 사용하여 난류를 시뮬레이션한 다음 마을의 흐름에 대한 홍수 범람 지도와 속도 벡터를 그립니다. 결과는 Hunza 강의 수로를 통해 모델링된 홍수파의 대부분이 Hunza 강의 범람원에 포함되지만 Hunza 강의 범람원 내부에 위치한 Miaun 및 chalat와 같은 일부 마을의 경우 더 높은 위험에 있음을 보여줍니다.

그러나 이들 마을의 예상 홍수 도달 시간은 각각 31분과 44분으로 인구를 안전한 지역으로 대피시키기에 충분한 시간인 반면, 알리 아바드에 인접한 하산 아바드와 같은 일부 마을의 경우 침수 위험이 더 높은 반면 마을의 예상 홍수 도착 시간은 12분으로 인구 대피에 충분하지 않으므로 홍수 억제를 위한 추가 홍수 보호 구조가 필요합니다.

최고속도의 추정치는 하천평야의 더 높은 전단응력, 심한 침식의 위험, 농경지 피해, 주거지 및 형태학적 변화가 예상됨을 의미한다. 댐 파손 분석(예: 최고 깊이, 최고 속도, 홍수 도달 시간 및 홍수 범람 지도)은 향후 위험 분석 및 홍수 관리의 지침으로만 사용해야 합니다.

Figure 2: Case Study Location on Map of Pakistan
Figure 2: Case Study Location on Map of Pakistan
Figure 3: Lake Condition 3 months after Landslide
Figure 3: Lake Condition 3 months after Landslide
Figure 5: 3D Model from the Merged DEM
Figure 5: 3D Model from the Merged DEM
Figure 7: Free Surface Elevation relative to local origin
Figure 7: Free Surface Elevation relative to local origin
Figure 8: Model of lake referenced over Google Earth Image
Figure 8: Model of lake referenced over Google Earth Image
Figure 9: Meshing in the 3D Terrain Model
Figure 9: Meshing in the 3D Terrain Model
Figure 10: Flow Depth Hydrographs of the downstream villages  (A) Karim Abad (B) Ghulmet (C) Thol (D) Chalat (E) Nomal
Figure 10: Flow Depth Hydrographs of the downstream villages (A) Karim Abad (B) Ghulmet (C) Thol (D) Chalat (E) Nomal
Figure 11: Flow Hydrograph at Karim Abad and Nomal Bridge
Figure 11: Flow Hydrograph at Karim Abad and Nomal Bridge
Figure 12: Flood Inundation Map of Karim Abad
Figure 12: Flood Inundation Map of Karim Abad
Figure 13: Flood Inundation Map of Ghulmet
Figure 13: Flood Inundation Map of Ghulmet
Figure 14: Flood Inundation Map of Chalat
Figure 14: Flood Inundation Map of Chalat
Figure 15: Velocity Vectors of flow at Karim Abad
Figure 15: Velocity Vectors of flow at Karim Abad
Figure 16: Velocity Vectors of Flow at Ghulmet
Figure 16: Velocity Vectors of Flow at Ghulmet
Figure 17: Velocity Vectors of Flow at Chalat
Figure 17: Velocity Vectors of Flow at Chalat

REFERENCES

[1]. Zhang, L. & Peng, M. & Chang, D.S. & Xu, Y. (2015).
Dam Failure Mechanisms and Risk Assessment, First
Ed. John Wiley and Sons, Singapore 473 pp.
10.1002/9781118558522.
[2]. T. L. Wahl, “Dam Breach Modeling – an Overview of
Analysis Methods,” 2nd Jt. Fed. Interagency Conf. Las
Vegas, NV, pp. 1–12, 2010.
[3]. Khosravi K. “Dam Break Analysis and Flood
Inundation Mapping : The Case Study of Sefid-Rud
Dam,” no. August 2019. DOI:
10.1016/B978-0-12-815998-9.00031-2
[4]. Robb, D. M., & Vasquez, J. A. (2015). Numerical
simulation of dam-break flows using depth-averaged
hydrodynamic and three-dimensional CFD models.
22nd Canadian Hydrotechnical Conference, (June).
[5]. Mohammad Rostami, M. S. (2015). Human Life Saving
by Simulation of Dam Break using Flow-3D. Trend in
Life Sciences, 4(3), 308–316
[6]. Gharbi, M., Soualmia, A., Dartus, D., & Masbernat, L.
(2016). Comparison of 1D and 2D hydraulic models
for floods simulation on the Medjerda River in
Tunisia. Journal of Materials and Environmental
Science, 7(8), 3017–3026. https://doi.org/10.1080/153
[7]. Andrei, A., Robert, B., & Erika, B. (2017). Numerical
Limitations of 1D Hydraulic Models Using MIKE11
or HEC-RAS software – A case study of Baraolt
River, Romania. IOP Conference Series: Materials
Science and Engineering, 245(7).
https://doi.org/10.1088/1757-899X/245/7/072010
[8]. Henderson, F.M. (1966). Open Channel Flow. MacMillan
Company, New York, USA, P. No 304-313
[9]. Betsholtz, A., & Nordlöf, B. (2017). Potentials and
limitations of 1D, 2D and coupled 1D-2D flood
modeling in HEC-RAS. Lund University, 128.
https://doi.org/10.1016/S0300-9440(03)00139-5
[10].Ozmen-Cagatay, H., & Kocaman, S. (2011). Dam-break
flow in the presence of obstacle: Experiment and CFD
simulation. Engineering Applications of Computational
Fluid Mechanics, 5(4), 541–552.
https://doi.org/10.1080/19942060.2011.11015393
[11].Toombes, L., & Chanson, H. (2011). Numerical
Limitations of Hydraulic Models. 10th Hydraulics
Conference, (July), 2322–2329.
https://doi.org/10.1016/j.jalz.2016.06.1613
[12].Zarein, M. (2015). Modeling Dam-Break Flows Using
a 3d Mike 3 Flow Model, (January).
[13].George, A. C., & Nair, B. T. (2015). Dam Break
Analysis Using BOSS DAMBRK. Aquatic Procedia,
4(Icwrcoe), 853–860.
https://doi.org/10.1016/j.aqpro.2015.02.10
[14].S. Roga and K. M. Pandey, “Computational Analysis of
Supersonic Flow Regime Using Ramp Injector with
Standard K- ω Turbulence Model” .World Academy of
research in Science and Engineering, vol. 2, no. 1, pp.
31–40, 2013.http:// doi.org/10.1.1.348.5862.

Wave Loads Assessment on Coastal Structures at Inundation Risk Using CFD Modelling

CFD 모델링을 사용하여 침수 위험이 있는 해안 구조물에 대한 파랑 하중 평가

Wave Loads Assessment on Coastal Structures at Inundation Risk Using CFD Modellin

Ana GomesJosé Pinho

Conference paperFirst Online: 19 November 2021

지난 수십 년 동안 극한 현상은 심각성과 주민, 기반 시설 및 인류 활동에 대한 위험 증가로 인해 우려를 불러일으켰습니다. 오늘날 해안 구조물이 범람하고 해변 침식 및 기반 시설 파괴가 전 세계 해안에서 흔히 발생합니다. 

완화에 효율적으로 기여하고 효율적인 방어 조치를 채택하려면 이러한 영향을 예상하는 것이 매우 중요합니다. 대규모 물리적 모델을 기반으로 하는 이전 실험 작업에서 목조 교각 상단의 고가 해안 구조물의 공극과 그에 따른 수평 및 수직 파도력 사이의 관계가 다양한 파도 하중 조건에 대해 연구되었습니다. 

이러한 실험 결과는 CFD 도구를 사용하여 유체/구조 상호 작용을 시뮬레이션하기 위한 수치 모델에 대한 보정 데이터 역할을 합니다. 주어진 파도 조건에 대해 물과 구조물 베이스 레벨 사이의 공극 높이를 다르게 하여 세 가지 시나리오를 시뮬레이션했습니다. 

수치 결과를 물리적 모델 결과와 비교하면 수치적으로 구한 수평력과 수직력의 최대값은 각각 평균 ​​14.4%와 25.4%의 상대차로 만족할 만합니다. 또한 구조물을 지지하는 교각에 작용하는 압력과 전단응력을 시뮬레이션하기 위해 실제 수치모델을 적용하였으며, 서로 다른 공극의 높이를 고려하고 각각의 CPU 시뮬레이션 시간을 평가하였습니다. 

이러한 방식으로 CFD 모델의 운영 모델링 기능을 평가하여 조기 경보 시스템 내에서 최종 사용에 대한 예측 선행 시간 제한을 결정했습니다.

키워드

Coastal risk, Elevated coastal structure, Numerical simulation, Flow-3D® , 해안 위험, 높은 해안 구조, 수치 시뮬레이션

References

  1. 1.Neumann B, Vafeidis AT, Zimmermann J, Nicholls RJ (2015) Future coastal population growth and exposure to sea-level rise and coastal flooding-a global assessment. PloS one, n. 10(3), p. X-XGoogle Scholar
  2. 2.Jones B, O’Neill BC (2016) Spatially explicit global population scenarios consistent with the Shared Socioeconomic Pathways. Environmental Research Letters, N. 11(8):1–10Google Scholar
  3. 3.Talbot J (2005) Repairing Florida’s Escambia Bay Bridge. Associated Construction Publications, available online at http://www.acppubs.com/article/CA511040
  4. 4.Kennedy A, Rogers S, Sallenger A, Gravois U, Zachry B, Dosa M, Zarama F (2011a) Building destruction from wave and surge on the bolivar peninsula during hurricane Ike. J. Waterw. Port, Coast. Ocean Eng. 137 (3), 132–141Google Scholar
  5. 5.Tomiczek T, Kennedy A, Rogers S (2014) Collapse limit state fragilities of woodframed residences from storm surge and waves during hurricane Ike. J. Waterw. Port, Coast. Ocean Eng. 140 (1), 43–55Google Scholar
  6. 6.Dentale F, Donnarumma G, Pugliese Carratelli E (2014a) Simulation of flow within armour blocks in a breakwater. J Coast Res 30(3):528–536CrossRefGoogle Scholar
  7. 7.Peregrine DH (2003) Water wave impact on walls. Annu Rev Fluid Mech 35:23–43CrossRefGoogle Scholar
  8. 8.Cuomo G, Piscopia R, Allsop W (2011) Evaluation of wave impact loads on caisson breakwaters based on joint probability of impact maxima and rise times. Coast Eng 58(1):9–27CrossRefGoogle Scholar
  9. 9.Faltinsen OM, Landrini M, Greco M (2004) Slamming in marine applications. J Eng Math 48(3–4):187–217CrossRefGoogle Scholar
  10. 10.Peregrine DH. et al (2005) Violent water wave impact on a wall. In: Proceedings of 14th Aha Huliko Winter Workshop, Honolulu, HawaiiGoogle Scholar
  11. 11.Cuomo G, Tirindelli M, Allsop W (2007) Wave in deck loads on exposed jetties. Coast Eng 54(9):657–679CrossRefGoogle Scholar
  12. 12.Azadbakht M, Yim SC (2015) Simulation and estimation of tsunami loads on bridge superstructures. J Waterw Port Coast Ocean Eng 141(2):20CrossRefGoogle Scholar
  13. 13.Wiebe DM, Park H, Cox DT (2014) Application of the Goda pressure formulae for horizontal wave loads on elevated structures. KSCE J. Civ. EngGoogle Scholar
  14. 14.Hayatdavoodi M, Seiffert B, Ertekin RC (2015) Experiments and calculations of cnoidal wave loads on a flat plate in shallow-water. J. Ocean Eng. Mar. Energy 1(1):77–99CrossRefGoogle Scholar
  15. 15.Wei Z, Dalrymple RA (2016) Numerical study on mitigating tsunami force on bridges by an SPH model. J. Ocean. Eng. Mar. Energy 2(365):365–380CrossRefGoogle Scholar
  16. 16.Bradner, C., Schumacher, T., Cox, D., Higgins, C.: Experimental Setup for a largescale bridge superstructure model subjected to waves. J. Waterw. Port, Coast. Ocean Eng. 137 (1), 3–11 (2011)Google Scholar
  17. 17.Xiao H, Huang W (2008) Numerical modeling of wave runup and forces on an idealized beachfront house. Ocean Eng 35(1):106–116CrossRefGoogle Scholar
  18. 18.Do T, van de Lindt JW, Cox D (2016) Performance-based design methodology for inundated elevated coastal structures subjected to wave load. Eng Struct 117:250–262CrossRefGoogle Scholar
  19. 19.Lara JL, Garcia N, Losada IJ (2006) RANS modeling applied to random wave interaction with submerged permeable structures. Coastal Eng 53(5–6):395–417CrossRefGoogle Scholar
  20. 20.Meringolo DD, Aristodemo F, Veltri P (2015) SPH numerical modeling of wave–perforated breakwater interaction. Coast Eng 101:48–68CrossRefGoogle Scholar
  21. 21.Al-Banaa K, Liu PLF (2007) Numerical study on the hydraulic performance of submerged porous breakwater under solitary wave attack. J Coast Res 50:201–205Google Scholar
  22. 22.Gomes, A., Pinho, J.L.S., Valente, T., Antunes do Carmo, J.S., V. Hegde, A.: Performance Assessment of a Semi-Circular Breakwater through CFD Modelling. J. Mar. Sci. Eng. 2020, 8, 226 (2020).Google Scholar
  23. 23.Flow Sciences Inc. Flow-3D User Manual, release 9.4, Santa Fe, NM, USA (2009).Google Scholar
  24. 24.Smith, H., Foster., D.L.: Modeling of flow around a cylinder over a scoured bed. J. Waterw., Port, Coastal, Ocean Eng.131(1),14–24 (2005).Google Scholar
  25. 25.Richardson JE, Panchang VG (1998) Three-dimensional simulation of scour-inducing flow at bridge piers. J Hydraul Eng 124(5):530–540CrossRefGoogle Scholar
  26. 26.Jin J, Meng B (2011) Computation of wave loads on the superstructures of coastal highway bridges. Ocean Eng 38(17–18):2185–2200CrossRefGoogle Scholar
  27. 27.Dentale F, Donnarumma G, Pugliese Carratelli E (2014b) Numerical wave interaction with tetrapods breakwater. Int. J. Nav. Arch. Ocean 6:13Google Scholar
  28. 28.Carratelli EP, Viccione G, Bovolin V (2016) Free surface flow impact on a vertical wall: a numerical assessment. Theor. Comput. Fluid Mech. 30(5):403–414CrossRefGoogle Scholar
  29. 29.Cavallaro, L., Dentale, F., Donnarumma, G., Foti, E., Musumeci, R.E., Pugliese Carratelli, E.: Rubble mound breakwater overtopping: estimation of the reliability of a 3D numerical simulation, In: ICCE 2012, Interntional Conference on Coastal Engineering, Santander, Spain (2012).Google Scholar
  30. 30.Vanneste, D., Suzuki, T., Altomare, C.: Comparison of numerical models for wave overtoping and impact on storm return walls. In: ICCE 2014, International Conference on Coastal Engineering, Seoul, Korea (2014).Google Scholar
  31. 31.Park H, Tomiczek T, Cox DT, van de Lindt JW, Lomonaco P (2017) Experimental modeling of horizontal and vertical wave forces on an elevated coastal structure. Coast Eng 128:58–74CrossRefGoogle Scholar
  32. 32.Isfahani AHG, Brethour JM (2009) On the Implementation of Two-Equation Turbulence Models in FLOW-3D; FSI-09-TN86; Flow Science: Santa Fe. NM, USAGoogle Scholar
  33. 33.Novais-Barbosa J (1985) Mecânica dos Fluidos e Hidráulica Geral Vol 1 e II Porto Editora, PortoGoogle Scholar
  34. 34.Le Méhauté B (1976) An Introduction to Hydrodynamics and Water Waves. Springer, Berlin/Heidelberg, GermanyCrossRefGoogle Scholar
Numerical study of the dam-break waves and Favre waves down sloped wet rigid-bed at laboratory scale

Numerical study of the dam-break waves and Favre waves down sloped wet rigid-bed at laboratory scale

WenjunLiua  BoWangb  YakunGuoc

a State Key Laboratory of Hydraulics and Mountain River Engineering, College of Water Resource and Hydropower, Sichuan University, Chengdu, 610065, China
State Key Laboratory of Hydraulics and Mountain River Engineering, Sichuan University, College Of Water Resource and Hydropower, Chengdu, 610065, China
faculty of Engineering & Informatics, University of Bradford, BD7 1DP, UK

Abstract

The bed slope and the tailwater depth are two important ones among the factors that affect the propagation of the dam-break flood and Favre waves. Most previous studies have only focused on the macroscopic characteristics of the dam-break flows or Favre waves under the condition of horizontal bed, rather than the internal movement characteristics in sloped channel. The present study applies two numerical models, namely, large eddy simulation (LES) and shallow water equations (SWEs) models embedded in the CFD software package FLOW-3D to analyze the internal movement characteristics of the dam-break flows and Favre waves, such as water level, the velocity distribution, the fluid particles acceleration and the bed shear stress, under the different bed slopes and water depth ratios. The results under the conditions considered in this study show that there is a flow state transition in the flow evolution for the steep bed slope even in water depth ratio α = 0.1 (α is the ratio of the tailwater depth to the reservoir water depth). The flow state transition shows that the wavefront changes from a breaking state to undular. Such flow transition is not observed for the horizontal slope and mild bed slope. The existence of the Favre waves leads to a significant increase of the vertical velocity and the vertical acceleration. In this situation, the SWEs model has poor prediction. Analysis reveals that the variation of the maximum bed shear stress is affected by both the bed slope and tailwater depth. Under the same bed slope (e.g., S0 = 0.02), the maximum bed shear stress position develops downstream of the dam when α = 0.1, while it develops towards the end of the reservoir when α = 0.7. For the same water depth ratio (e.g., α = 0.7), the maximum bed shear stress position always locates within the reservoir at S0 = 0.02, while it appears in the downstream of the dam for S0 = 0 and 0.003 after the flow evolves for a while. The comparison between the numerical simulation and experimental measurements shows that the LES model can predict the internal movement characteristics with satisfactory accuracy. This study improves the understanding of the effect of both the bed slope and the tailwater depth on the internal movement characteristics of the dam-break flows and Favre waves, which also provides a valuable reference for determining the flood embankment height and designing the channel bed anti-scouring facility.

댐붕괴 홍수와 파브르 파도의 전파에 영향을 미치는 요인 중 하상경사와 후미수심은 두 가지 중요한 요소이다. 대부분의 선행 연구들은 경사 수로에서의 내부 이동 특성보다는 수평층 조건에서 댐파괴류나 Favre파동의 거시적 특성에만 초점을 맞추었다.

본 연구에서는 CFD 소프트웨어 패키지 FLOW-3D에 내장된 LES(Large Eddy Simulation) 및 SWE(Shallow Water Equation) 모델의 두 가지 수치 모델을 적용하여 댐-파괴 흐름 및 Favre 파도의 내부 이동 특성을 분석합니다.

수위, 속도 분포, 유체 입자 가속도 및 층 전단 응력, 다양한 층 경사 및 수심 비율로. 본 연구에서 고려한 조건하의 결과는 수심비 α = 0.1(α는 저수지 수심에 대한 tailwater 깊이의 비율)에서도 급경사면에 대한 유동상태 전이가 있음을 보여준다. 유동 상태 전이는 파면이 파단 상태에서 비정형으로 변하는 것을 보여줍니다.

수평 경사와 완만한 바닥 경사에서는 이러한 흐름 전이가 관찰되지 않습니다. Favre 파의 존재는 수직 속도와 수직 가속도의 상당한 증가로 이어집니다. 이 상황에서 SWE 모델은 예측이 좋지 않습니다.

분석에 따르면 최대 바닥 전단 응력의 변화는 바닥 경사와 꼬리 수심 모두에 영향을 받습니다. 동일한 바닥 경사(예: S0 = 0.02)에서 최대 바닥 전단 응력 위치는 α = 0.1일 때 댐의 하류에서 발생하고 α = 0.7일 때 저수지의 끝쪽으로 발생합니다.

동일한 수심비(예: α = 0.7)에 대해 최대 바닥 전단 응력 위치는 항상 S0 = 0.02에서 저수지 내에 위치하는 반면, S0 = 0 및 0.003에 대해 흐름이 진화한 후 댐 하류에 나타납니다. 수치적 시뮬레이션과 실험적 측정을 비교한 결과 LES 모델이 내부 움직임 특성을 만족스러운 정확도로 예측할 수 있음을 알 수 있습니다.

본 연구는 댐 파절류 및 Favre파의 내부 이동 특성에 대한 하상 경사 및 후미 수심의 영향에 대한 이해를 향상 시키며, 이는 또한 제방 높이를 결정하고 수로 저반위 설계를 위한 귀중한 참고자료를 제공한다.

Keywords

Figure Numerical study of the dam-break waves and Favre waves down sloped wet rigid-bed at laboratory scale
Figure Numerical study of the dam-break waves and Favre waves down sloped wet rigid-bed at laboratory scale

Dam-break flow, Bed slope, Wet bed, Velocity profile, Bed shear stress, Large eddy simulation
댐파괴유동, 하상경사, 습상, 유속분포, 하상전단응력, 대와류 시뮬레이션

Figure 17. Longitudinal turbulent kinetic energy distribution on the smooth and triangular macroroughnesses: (A) Y/2; (B) Y/6.

Numerical Simulations of the Flow Field of a Submerged Hydraulic Jump over Triangular Macroroughnesses

Triangular Macroroughnesses 대한 잠긴 수압 점프의 유동장 수치 시뮬레이션

by Amir Ghaderi 1,2,Mehdi Dasineh 3,Francesco Aristodemo 2 andCostanza Aricò 4,*1Department of Civil Engineering, Faculty of Engineering, University of Zanjan, Zanjan 537138791, Iran2Department of Civil Engineering, University of Calabria, Arcavacata, 87036 Rende, Italy3Department of Civil Engineering, Faculty of Engineering, University of Maragheh, Maragheh 8311155181, Iran4Department of Engineering, University of Palermo, Viale delle Scienze, 90128 Palermo, Italy*Author to whom correspondence should be addressed.Academic Editor: Anis YounesWater202113(5), 674; https://doi.org/10.3390/w13050674

Abstract

The submerged hydraulic jump is a sudden change from the supercritical to subcritical flow, specified by strong turbulence, air entrainment and energy loss. Despite recent studies, hydraulic jump characteristics in smooth and rough beds, the turbulence, the mean velocity and the flow patterns in the cavity region of a submerged hydraulic jump in the rough beds, especially in the case of triangular macroroughnesses, are not completely understood. The objective of this paper was to numerically investigate via the FLOW-3D model the effects of triangular macroroughnesses on the characteristics of submerged jump, including the longitudinal profile of streamlines, flow patterns in the cavity region, horizontal velocity profiles, streamwise velocity distribution, thickness of the inner layer, bed shear stress coefficient, Turbulent Kinetic Energy (TKE) and energy loss, in different macroroughness arrangements and various inlet Froude numbers (1.7 < Fr1 < 9.3). To verify the accuracy and reliability of the present numerical simulations, literature experimental data were considered.

Keywords: submerged hydraulic jumptriangular macroroughnessesTKEbed shear stress coefficientvelocityFLOW-3D model

수중 유압 점프는 강한 난류, 공기 동반 및 에너지 손실로 지정된 초임계에서 아임계 흐름으로의 급격한 변화입니다. 최근 연구에도 불구하고, 특히 삼각형 거시적 거칠기의 경우, 평활 및 거친 베드에서의 수압 점프 특성, 거친 베드에서 잠긴 수압 점프의 공동 영역에서 난류, 평균 속도 및 유동 패턴이 완전히 이해되지 않았습니다.

이 논문의 목적은 유선의 종방향 프로파일, 캐비티 영역의 유동 패턴, 수평 속도 프로파일, 스트림 방향 속도 분포, 두께를 포함하여 서브머지드 점프의 특성에 대한 삼각형 거시 거칠기의 영향을 FLOW-3D 모델을 통해 수치적으로 조사하는 것이었습니다.

내부 층의 층 전단 응력 계수, 난류 운동 에너지(TKE) 및 에너지 손실, 다양한 거시 거칠기 배열 및 다양한 입구 Froude 수(1.7 < Fr1 < 9.3). 현재 수치 시뮬레이션의 정확성과 신뢰성을 검증하기 위해 문헌 실험 데이터를 고려했습니다.

 Introduction

격렬한 난류 혼합과 기포 동반이 있는 수압 점프는 초임계에서 아임계 흐름으로의 변화 과정으로 간주됩니다[1]. 자유 및 수중 유압 점프는 일반적으로 게이트, 배수로 및 둑과 같은 수력 구조 아래의 에너지 손실에 적합합니다. 매끄러운 베드에서 유압 점프의 특성은 널리 연구되었습니다[2,3,4,5,6,7,8,9].

베드의 거칠기 요소가 매끄러운 베드와 비교하여 수압 점프의 특성에 어떻게 영향을 미치는지 예측하기 위해 거시적 거칠기에 대한 자유 및 수중 수력 점프에 대해 여러 실험 및 수치 연구가 수행되었습니다. Ead와 Rajaratnam[10]은 사인파 거대 거칠기에 대한 수리학적 점프의 특성을 조사하고 무차원 분석을 통해 수면 프로파일과 배출을 정규화했습니다.

Tokyayet al. [11]은 두 사인 곡선 거대 거칠기에 대한 점프 길이 비율과 에너지 손실이 매끄러운 베드보다 각각 35% 더 작고 6% 더 높다는 것을 관찰했습니다. Abbaspur et al. [12]는 6개의 사인파형 거대 거칠기에 대한 수력학적 점프의 특성을 연구했습니다. 그 결과, 꼬리수심과 점프길이는 평상보다 낮았고 Froude 수는 점프길이에 큰 영향을 미쳤습니다.

Shafai-Bejestan과 Neisi[13]는 수압 점프에 대한 마름모꼴 거대 거칠기의 영향을 조사했습니다. 결과는 마름모꼴 거시 거칠기를 사용하면 매끄러운 침대와 비교하여 꼬리 수심과 점프 길이를 감소시키는 것으로 나타났습니다. Izadjoo와 Shafai-Bejestan[14]은 다양한 사다리꼴 거시 거칠기에 대한 수압 점프를 연구했습니다.

그들은 전단응력계수가 평활층보다 10배 이상 크고 점프길이가 50% 감소하는 것을 관찰하였습니다. Nikmehr과 Aminpour[15]는 Flow-3D 모델 버전 11.2[16]를 사용하여 사다리꼴 블록이 있는 거시적 거칠기에 대한 수력학적 점프의 특성을 조사했습니다. 결과는 거시 거칠기의 높이와 거리가 증가할수록 전단 응력 계수뿐만 아니라 베드 근처에서 속도가 감소하는 것으로 나타났습니다.

Ghaderi et al. [17]은 다양한 형태의 거시 거칠기(삼각형, 정사각형 및 반 타원형)에 대한 자유 및 수중 수력 점프 특성을 연구했습니다. 결과는 Froude 수의 증가에 따라 자유 및 수중 점프에서 전단 응력 계수, 에너지 손실, 수중 깊이, 미수 깊이 및 상대 점프 길이가 증가함을 나타냅니다.

자유 및 수중 점프에서 가장 높은 전단 응력과 에너지 손실은 삼각형의 거시 거칠기가 존재할 때 발생했습니다. Elsebaie와 Shabayek[18]은 5가지 형태의 거시적 거칠기(삼각형, 사다리꼴, 2개의 측면 경사 및 직사각형이 있는 정현파)에 대한 수력학적 점프의 특성을 연구했습니다. 결과는 모든 거시적 거칠기에 대한 에너지 손실이 매끄러운 베드에서보다 15배 이상이라는 것을 보여주었습니다.

Samadi-Boroujeni et al. [19]는 다양한 각도의 6개의 삼각형 거시 거칠기에 대한 수력 점프를 조사한 결과 삼각형 거시 거칠기가 평활 베드에 비해 점프 길이를 줄이고 에너지 손실과 베드 전단 응력 계수를 증가시키는 것으로 나타났습니다.

Ahmed et al. [20]은 매끄러운 베드와 삼각형 거시 거칠기에서 수중 수력 점프 특성을 조사했습니다. 결과는 부드러운 침대와 비교할 때 잠긴 깊이와 점프 길이가 감소했다고 밝혔습니다. 표 1은 다른 연구자들이 제시한 과거의 유압 점프에 대한 실험 및 수치 연구의 세부 사항을 나열합니다.

Table 1. Main characteristics of some past experimental and numerical studies on hydraulic jumps.

ReferenceShape Bed-Channel Type-
Jump Type
Channel Dimension (m)Roughness (mm)Fr1Investigated Flow
Properties
Ead and Rajaratnam [10]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-Free jumpCL1 = 7.60
CW2 = 0.44
CH3 = 0.60
-Corrugated sheets (RH4 = 13 and 22)4–10-Upstream and tailwater depths-Jump length-Roller length-Velocity-Water surface profile
Tokyay et al. [11]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-Free jumpCL = 10.50
CW = 0.253
CH = 0.432
-Two sinusoidal corrugated (RH = 10 and 13)5–12-Depth ratio-Jump length-Energy loss
Izadjoo and Shafai-Bejestan [14]-Smooth and rough beds-Two rectangular-channel-Free jumpCL = 1.2, 9
CW = 0.25, 0.50
CH = 0.40
Baffle with trapezoidal cross section
(RH: 13 and 26)
6–12-Upstream and tailwater depths-Jump length-Velocity-Bed shear stress coefficient
Abbaspour et al. [12]-Horizontal bed with slope 0.002-Rectangular channel—smooth and rough beds-Free jumpCL = 10
CW = 0.25
CH = 0.50
-Sinusoidal bed (RH = 15,20, 25 and 35)3.80–8.60-Water surface profile-Depth ratio-Jump length-Energy loss-Velocity profiles-Bed shear stress coefficient
Shafai-Bejestan and Neisi [13]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-Free jumpCL = 7.50
CW = 0.35
CH = 0.50
Lozenge bed4.50–12-Sequent depth-Jump length
Elsebaie and Shabayek [18]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-With side slopes of 45 degrees for two trapezoidal and triangular macroroughnesses and of 60 degrees for other trapezoidal macroroughnesses-Free jumpCL = 9
CW = 0.295
CH = 0.32
-Sinusoidal-Triangular-Trapezoidal with two side-Rectangular-(RH = 18 and corrugation wavelength = 65)50-Water surface profile-Sequent depth-Jump length-Bed shear stress coefficient
Samadi-Boroujeni et al. [19]-Rectangular channel-Smooth and rough beds-Free jumpCL = 12
CW = 0.40
CH = 0.40
-Six triangular corrugated (RH = 2.5)6.10–13.10-Water surface profile-Sequent depth-Jump length-Energy loss-Velocity profiles-Bed shear stress coefficient
Ahmed et al. [20]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-Submerged jumpCL = 24.50
CW = 0.75
CH = 0.70
-Triangular corrugated sheet (RH = 40)1.68–9.29-Conjugated and tailwater depths-Submerged ratio-Deficit depth-Relative jump length-Jump length-Relative roller jump length-Jump efficiency-Bed shear stress coefficient
Nikmehr and Aminpour [15]-Horizontal bed with slope 0.002-Rectangular channel-Rough bed-Free jumpCL = 12
CW = 0.25
CH = 0.50
-Trapezoidal blocks (RH = 2, 3 and 4)5.01–13.70-Water surface profile-Sequent depth-Jump length-Roller length-Velocity
Ghaderi et al. [17]-Smooth and rough beds-Rectangular channel-Free and submerged jumpCL = 4.50
CW = 0.75
CH = 0.70
-Triangular, square and semi-oval macroroughnesses (RH = 40 and distance of roughness of I = 40, 80, 120, 160 and 200)1.70–9.30-Horizontal velocity distributions-Bed shear stress coefficient-Sequent depth ratio and submerged depth ratio-Jump length-Energy loss
Present studyRectangular channel
Smooth and rough beds
Submerged jump
CL = 4.50
CW = 0.75
CH = 0.70
-Triangular macroroughnesses (RH = 40 and distance of roughness of I = 40, 80, 120, 160 and 200)1.70–9.30-Longitudinal profile of streamlines-Flow patterns in the cavity region-Horizontal velocity profiles-Streamwise velocity distribution-Bed shear stress coefficient-TKE-Thickness of the inner layer-Energy loss

CL1: channel length, CW2: channel width, CH3: channel height, RH4: roughness height.

이전에 논의된 조사의 주요 부분은 실험실 접근 방식을 기반으로 하며 사인파, 마름모꼴, 사다리꼴, 정사각형, 직사각형 및 삼각형 매크로 거칠기가 공액 깊이, 잠긴 깊이, 점프 길이, 에너지 손실과 같은 일부 자유 및 수중 유압 점프 특성에 어떻게 영향을 미치는지 조사합니다.

베드 및 전단 응력 계수. 더욱이, 저자[17]에 의해 다양한 형태의 거시적 거칠기에 대한 수력학적 점프에 대한 이전 발표된 논문을 참조하면, 삼각형의 거대조도는 가장 높은 층 전단 응력 계수 및 에너지 손실을 가지며 또한 가장 낮은 잠긴 깊이, tailwater를 갖는 것으로 관찰되었습니다.

다른 거친 모양, 즉 정사각형 및 반 타원형과 부드러운 침대에 비해 깊이와 점프 길이. 따라서 본 논문에서는 삼각형 매크로 거칠기를 사용하여(일정한 거칠기 높이가 T = 4cm이고 삼각형 거칠기의 거리가 I = 4, 8, 12, 16 및 20cm인 다른 T/I 비율에 대해), 특정 캐비티 영역의 유동 패턴, 난류 운동 에너지(TKE) 및 흐름 방향 속도 분포와 같은 연구가 필요합니다.

CFD(Computational Fluid Dynamics) 방법은 자유 및 수중 유압 점프[21]와 같은 복잡한 흐름의 모델링 프로세스를 수행하는 중요한 도구로 등장하며 수중 유압 점프의 특성은 CFD 시뮬레이션을 사용하여 정확하게 예측할 수 있습니다 [22,23 ].

본 논문은 초기에 수중 유압 점프의 주요 특성, 수치 모델에 대한 입력 매개변수 및 Ahmed et al.의 참조 실험 조사를 제시합니다. [20], 검증 목적으로 보고되었습니다. 또한, 본 연구에서는 유선의 종방향 프로파일, 캐비티 영역의 유동 패턴, 수평 속도 프로파일, 내부 층의 두께, 베드 전단 응력 계수, TKE 및 에너지 손실과 같은 특성을 조사할 것입니다.

Figure 1. Definition sketch of a submerged hydraulic jump at triangular macroroughnesses.
Figure 1. Definition sketch of a submerged hydraulic jump at triangular macroroughnesses.

Table 2. Effective parameters in the numerical model.

Bed TypeQ
(l/s)
I
(cm)
T (cm)d (cm)y1
(cm)
y4
(cm)
Fr1= u1/(gy1)0.5SRe1= (u1y1)/υ
Smooth30, 4551.62–3.839.64–32.101.7–9.30.26–0.5039,884–59,825
Triangular macroroughnesses30, 454, 8, 12, 16, 20451.62–3.846.82–30.081.7–9.30.21–0.4439,884–59,825
Figure 2. Longitudinal profile of the experimental flume (Ahmed et al. [20]).
Figure 2. Longitudinal profile of the experimental flume (Ahmed et al. [20]).

Table 3. Main flow variables for the numerical and physical models (Ahmed et al. [20]).

ModelsBed TypeQ (l/s)d (cm)y1 (cm)u1 (m/s)Fr1
Numerical and PhysicalSmooth4551.62–3.831.04–3.701.7–9.3
T/I = 0.54551.61–3.831.05–3.711.7–9.3
T/I = 0.254551.60–3.841.04–3.711.7–9.3
Figure 3. The boundary conditions governing the simulations.
Figure 3. The boundary conditions governing the simulations.
Figure 4. Sketch of mesh setup.
Figure 4. Sketch of mesh setup.

Table 4. Characteristics of the computational grids.

MeshNested Block Cell Size (cm)Containing Block Cell Size (cm)
10.551.10
20.651.30
30.851.70

Table 5. The numerical results of mesh convergence analysis.

ParametersAmounts
fs1 (-)7.15
fs2 (-)6.88
fs3 (-)6.19
K (-)5.61
E32 (%)10.02
E21 (%)3.77
GCI21 (%)3.03
GCI32 (%)3.57
GCI32/rp GCI210.98
Figure 5. Time changes of the flow discharge in the inlet and outlet boundaries conditions (A): Q = 0.03 m3/s (B): Q = 0.045 m3/s.
Figure 5. Time changes of the flow discharge in the inlet and outlet boundaries conditions (A): Q = 0.03 m3/s (B): Q = 0.045 m3/s.
Figure 6. The evolutionary process of a submerged hydraulic jump on the smooth bed—Q = 0.03 m3/s.
Figure 6. The evolutionary process of a submerged hydraulic jump on the smooth bed—Q = 0.03 m3/s.
Figure 7. Numerical versus experimental basic parameters of the submerged hydraulic jump. (A): y3/y1; and (B): y4/y1.
Figure 7. Numerical versus experimental basic parameters of the submerged hydraulic jump. (A): y3/y1; and (B): y4/y1.
Figure 8. Velocity vector field and flow pattern through the gate in a submerged hydraulic jump condition: (A) smooth bed; (B) triangular macroroughnesses.
Figure 8. Velocity vector field and flow pattern through the gate in a submerged hydraulic jump condition: (A) smooth bed; (B) triangular macroroughnesses.
Figure 9. Velocity vector distributions in the x–z plane (y = 0) within the cavity region.
Figure 9. Velocity vector distributions in the x–z plane (y = 0) within the cavity region.
Figure 10. Typical vertical distribution of the mean horizontal velocity in a submerged hydraulic jump [46].
Figure 10. Typical vertical distribution of the mean horizontal velocity in a submerged hydraulic jump [46].
Figure 11. Typical horizontal velocity profiles in a submerged hydraulic jump on smooth bed and triangular macroroughnesses.
Figure 11. Typical horizontal velocity profiles in a submerged hydraulic jump on smooth bed and triangular macroroughnesses.
Figure 12. Horizontal velocity distribution at different distances from the sluice gate for the different T/I for Fr1 = 6.1
Figure 12. Horizontal velocity distribution at different distances from the sluice gate for the different T/I for Fr1 = 6.1
Figure 13. Stream-wise velocity distribution for the triangular macroroughnesses with T/I = 0.5 and 0.25.
Figure 13. Stream-wise velocity distribution for the triangular macroroughnesses with T/I = 0.5 and 0.25.
Figure 14. Dimensionless horizontal velocity distribution in the submerged hydraulic jump for different Froude numbers in triangular macroroughnesses.
Figure 14. Dimensionless horizontal velocity distribution in the submerged hydraulic jump for different Froude numbers in triangular macroroughnesses.
Figure 15. Spatial variations of (umax/u1) and (δ⁄y1).
Figure 15. Spatial variations of (umax/u1) and (δ⁄y1).
Figure 16. The shear stress coefficient (ε) versus the inlet Froude number (Fr1).
Figure 16. The shear stress coefficient (ε) versus the inlet Froude number (Fr1).
Figure 17. Longitudinal turbulent kinetic energy distribution on the smooth and triangular macroroughnesses: (A) Y/2; (B) Y/6.
Figure 17. Longitudinal turbulent kinetic energy distribution on the smooth and triangular macroroughnesses: (A) Y/2; (B) Y/6.
Figure 18. The energy loss (EL/E3) of the submerged jump versus inlet Froude number (Fr1).
Figure 18. The energy loss (EL/E3) of the submerged jump versus inlet Froude number (Fr1).

Conclusions

  • 본 논문에서는 유선의 종방향 프로파일, 공동 영역의 유동 패턴, 수평 속도 프로파일, 스트림 방향 속도 분포, 내부 층의 두께, 베드 전단 응력 계수, 난류 운동 에너지(TKE)를 포함하는 수중 유압 점프의 특성을 제시하고 논의했습니다. ) 및 삼각형 거시적 거칠기에 대한 에너지 손실. 이러한 특성은 FLOW-3D® 모델을 사용하여 수치적으로 조사되었습니다. 자유 표면을 시뮬레이션하기 위한 VOF(Volume of Fluid) 방법과 난류 RNG k-ε 모델이 구현됩니다. 본 모델을 검증하기 위해 평활층과 삼각형 거시 거칠기에 대해 수치 시뮬레이션과 실험 결과를 비교했습니다. 본 연구의 다음과 같은 결과를 도출할 수 있다.
  • 개발 및 개발 지역의 삼각형 거시 거칠기의 흐름 패턴은 수중 유압 점프 조건의 매끄러운 바닥과 비교하여 더 작은 영역에서 동일합니다. 삼각형의 거대 거칠기는 거대 거칠기 사이의 공동 영역에서 또 다른 시계 방향 와류의 형성으로 이어집니다.
  • T/I = 1, 0.5 및 0.33과 같은 거리에 대해 속도 벡터 분포는 캐비티 영역에서 시계 방향 소용돌이를 표시하며, 여기서 속도의 크기는 평균 유속보다 훨씬 작습니다. 삼각형 거대 거칠기(T/I = 0.25 및 0.2) 사이의 거리를 늘리면 캐비티 영역에 크기가 다른 두 개의 소용돌이가 형성됩니다.
  • 삼각형 거시조도 사이의 거리가 충분히 길면 흐름이 다음 조도에 도달할 때까지 속도 분포가 회복됩니다. 그러나 짧은 거리에서 흐름은 속도 분포의 적절한 회복 없이 다음 거칠기에 도달합니다. 따라서 거시 거칠기 사이의 거리가 감소함에 따라 마찰 계수의 증가율이 감소합니다.
  • 삼각형의 거시적 거칠기에서, 잠수 점프의 지정된 섹션에서 최대 속도는 자유 점프보다 높은 값으로 이어집니다. 또한, 수중 점프에서 두 가지 유형의 베드(부드러움 및 거친 베드)에 대해 깊이 및 와류 증가로 인해 베드로부터의 최대 속도 거리는 감소합니다. 잠수 점프에서 경계층 두께는 자유 점프보다 얇습니다.
  • 매끄러운 베드의 난류 영역은 게이트로부터의 거리에 따라 생성되고 자유 표면 롤러 영역 근처에서 발생하는 반면, 거시적 거칠기에서는 난류가 게이트 근처에서 시작되어 더 큰 강도와 제한된 스위프 영역으로 시작됩니다. 이는 반시계 방향 순환의 결과입니다. 거시 거칠기 사이의 공간에서 자유 표면 롤러 및 시계 방향 와류.
  • 삼각 거시 거칠기에서 침지 점프의 베드 전단 응력 계수와 에너지 손실은 유입구 Froude 수의 증가에 따라 증가하는 매끄러운 베드에서 발견된 것보다 더 큽니다. T/I = 0.50 및 0.20에서 최고 및 최저 베드 전단 응력 계수 및 에너지 손실이 평활 베드에 비해 거칠기 요소의 거리가 증가함에 따라 발생합니다.
  • 거의 거칠기 요소가 있는 삼각형 매크로 거칠기의 존재에 의해 주어지는 점프 길이와 잠긴 수심 및 꼬리 수심의 감소는 결과적으로 크기, 즉 길이 및 높이가 감소하는 정수조 설계에 사용될 수 있습니다.
  • 일반적으로 CFD 모델은 다양한 수력 조건 및 기하학적 배열을 고려하여 잠수 점프의 특성 예측을 시뮬레이션할 수 있습니다. 캐비티 영역의 흐름 패턴, 흐름 방향 및 수평 속도 분포, 베드 전단 응력 계수, TKE 및 유압 점프의 에너지 손실은 수치적 방법으로 시뮬레이션할 수 있습니다. 그러나 거시적 차원과 유동장 및 공동 유동의 변화에 ​​대한 다양한 배열에 대한 연구는 향후 과제로 남아 있다.

References

  1. White, F.M. Viscous Fluid Flow, 2nd ed.; McGraw-Hill University of Rhode Island: Montreal, QC, Canada, 1991. [Google Scholar]
  2. Launder, B.E.; Rodi, W. The turbulent wall jet. Prog. Aerosp. Sci. 197919, 81–128. [Google Scholar] [CrossRef]
  3. McCorquodale, J.A. Hydraulic jumps and internal flows. In Encyclopedia of Fluid Mechanics; Cheremisinoff, N.P., Ed.; Golf Publishing: Houston, TX, USA, 1986; pp. 120–173. [Google Scholar]
  4. Federico, I.; Marrone, S.; Colagrossi, A.; Aristodemo, F.; Antuono, M. Simulating 2D open-channel flows through an SPH model. Eur. J. Mech. B Fluids 201234, 35–46. [Google Scholar] [CrossRef]
  5. Khan, S.A. An analytical analysis of hydraulic jump in triangular channel: A proposed model. J. Inst. Eng. India Ser. A 201394, 83–87. [Google Scholar] [CrossRef]
  6. Mortazavi, M.; Le Chenadec, V.; Moin, P.; Mani, A. Direct numerical simulation of a turbulent hydraulic jump: Turbulence statistics and air entrainment. J. Fluid Mech. 2016797, 60–94. [Google Scholar] [CrossRef]
  7. Daneshfaraz, R.; Ghahramanzadeh, A.; Ghaderi, A.; Joudi, A.R.; Abraham, J. Investigation of the effect of edge shape on characteristics of flow under vertical gates. J. Am. Water Works Assoc. 2016108, 425–432. [Google Scholar] [CrossRef]
  8. Azimi, H.; Shabanlou, S.; Kardar, S. Characteristics of hydraulic jump in U-shaped channels. Arab. J. Sci. Eng. 201742, 3751–3760. [Google Scholar] [CrossRef]
  9. De Padova, D.; Mossa, M.; Sibilla, S. SPH numerical investigation of characteristics of hydraulic jumps. Environ. Fluid Mech. 201818, 849–870. [Google Scholar] [CrossRef]
  10. Ead, S.A.; Rajaratnam, N. Hydraulic jumps on corrugated beds. J. Hydraul. Eng. 2002128, 656–663. [Google Scholar] [CrossRef]
  11. Tokyay, N.D. Effect of channel bed corrugations on hydraulic jumps. In Proceedings of the World Water and Environmental Resources Congress 2005, Anchorage, AK, USA, 15–19 May 2005; pp. 1–9. [Google Scholar]
  12. Abbaspour, A.; Dalir, A.H.; Farsadizadeh, D.; Sadraddini, A.A. Effect of sinusoidal corrugated bed on hydraulic jump characteristics. J. Hydro-Environ. Res. 20093, 109–117. [Google Scholar] [CrossRef]
  13. Shafai-Bejestan, M.S.; Neisi, K. A new roughened bed hydraulic jump stilling basin. Asian J. Appl. Sci. 20092, 436–445. [Google Scholar] [CrossRef]
  14. Izadjoo, F.; Shafai-Bejestan, M. Corrugated bed hydraulic jump stilling basin. J. Appl. Sci. 20077, 1164–1169. [Google Scholar] [CrossRef]
  15. Nikmehr, S.; Aminpour, Y. Numerical Simulation of Hydraulic Jump over Rough Beds. Period. Polytech. Civil Eng. 201764, 396–407. [Google Scholar] [CrossRef]
  16. Flow Science Inc. FLOW-3D V 11.2 User’s Manual; Flow Science Inc.: Santa Fe, NM, USA, 2016. [Google Scholar]
  17. Ghaderi, A.; Dasineh, M.; Aristodemo, F.; Ghahramanzadeh, A. Characteristics of free and submerged hydraulic jumps over different macroroughnesses. J. Hydroinform. 202022, 1554–1572. [Google Scholar] [CrossRef]
  18. Elsebaie, I.H.; Shabayek, S. Formation of hydraulic jumps on corrugated beds. Int. J. Civil Environ. Eng. IJCEE–IJENS 201010, 37–47. [Google Scholar]
  19. Samadi-Boroujeni, H.; Ghazali, M.; Gorbani, B.; Nafchi, R.F. Effect of triangular corrugated beds on the hydraulic jump characteristics. Can. J. Civil Eng. 201340, 841–847. [Google Scholar] [CrossRef]
  20. Ahmed, H.M.A.; El Gendy, M.; Mirdan, A.M.H.; Ali, A.A.M.; Haleem, F.S.F.A. Effect of corrugated beds on characteristics of submerged hydraulic jump. Ain Shams Eng. J. 20145, 1033–1042. [Google Scholar] [CrossRef]
  21. Viti, N.; Valero, D.; Gualtieri, C. Numerical simulation of hydraulic jumps. Part 2: Recent results and future outlook. Water 201911, 28. [Google Scholar] [CrossRef]
  22. Gumus, V.; Simsek, O.; Soydan, N.G.; Akoz, M.S.; Kirkgoz, M.S. Numerical modeling of submerged hydraulic jump from a sluice gate. J. Irrig. Drain. Eng. 2016142, 04015037. [Google Scholar] [CrossRef]
  23. Jesudhas, V.; Roussinova, V.; Balachandar, R.; Barron, R. Submerged hydraulic jump study using DES. J. Hydraul. Eng. 2017143, 04016091. [Google Scholar] [CrossRef]
  24. Rajaratnam, N. The hydraulic jump as a wall jet. J. Hydraul. Div. 196591, 107–132. [Google Scholar] [CrossRef]
  25. Hager, W.H. Energy Dissipaters and Hydraulic Jump; Kluwer Academic Publisher: Dordrecht, The Netherlands, 1992; pp. 185–224. [Google Scholar]
  26. Long, D.; Steffler, P.M.; Rajaratnam, N. LDA study of flow structure in submerged Hydraulic jumps. J. Hydraul. Res. 199028, 437–460. [Google Scholar] [CrossRef]
  27. Chow, V.T. Open Channel Hydraulics; McGraw-Hill: New York, NY, USA, 1959. [Google Scholar]
  28. Wilcox, D.C. Turbulence Modeling for CFD, 3rd ed.; DCW Industries, Inc.: La Canada, CA, USA, 2006. [Google Scholar]
  29. Hirt, C.W.; Nichols, B.D. Volume of fluid (VOF) method for the dynamics of free boundaries. J. Comput. Phys. 198139, 201–225. [Google Scholar] [CrossRef]
  30. Pourshahbaz, H.; Abbasi, S.; Pandey, M.; Pu, J.H.; Taghvaei, P.; Tofangdar, N. Morphology and hydrodynamics numerical simulation around groynes. ISH J. Hydraul. Eng. 2020, 1–9. [Google Scholar] [CrossRef]
  31. Choufu, L.; Abbasi, S.; Pourshahbaz, H.; Taghvaei, P.; Tfwala, S. Investigation of flow, erosion, and sedimentation pattern around varied groynes under different hydraulic and geometric conditions: A numerical study. Water 201911, 235. [Google Scholar] [CrossRef]
  32. Zhenwei, Z.; Haixia, L. Experimental investigation on the anisotropic tensorial eddy viscosity model for turbulence flow. Int. J. Heat Technol. 201634, 186–190. [Google Scholar]
  33. Carvalho, R.; Lemos Ramo, C. Numerical computation of the flow in hydraulic jump stilling basins. J. Hydraul. Res. 200846, 739–752. [Google Scholar] [CrossRef]
  34. Bayon, A.; Valero, D.; García-Bartual, R.; López-Jiménez, P.A. Performance assessment of Open FOAM and FLOW-3D in the numerical modeling of a low Reynolds number hydraulic jump. Environ. Model. Softw. 201680, 322–335. [Google Scholar] [CrossRef]
  35. Daneshfaraz, R.; Ghaderi, A.; Akhtari, A.; Di Francesco, S. On the Effect of Block Roughness in Ogee Spillways with Flip Buckets. Fluids 20205, 182. [Google Scholar] [CrossRef]
  36. Ghaderi, A.; Abbasi, S. CFD simulation of local scouring around airfoil-shaped bridge piers with and without collar. Sādhanā 201944, 216. [Google Scholar] [CrossRef]
  37. Ghaderi, A.; Daneshfaraz, R.; Dasineh, M.; Di Francesco, S. Energy Dissipation and Hydraulics of Flow over Trapezoidal–Triangular Labyrinth Weirs. Water 202012, 1992. [Google Scholar] [CrossRef]
  38. Ghaderi, A.; Abbasi, S.; Abraham, J.; Azamathulla, H.M. Efficiency of trapezoidal labyrinth shaped stepped spillways. Flow Meas. Instrum. 202072, 101711. [Google Scholar] [CrossRef]
  39. Yakhot, V.; Orszag, S.A. Renormalization group analysis of turbulence. I. basic theory. J. Sci. Comput. 19861, 3–51. [Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]
  40. Biscarini, C.; Di Francesco, S.; Ridolfi, E.; Manciola, P. On the simulation of floods in a narrow bending valley: The malpasset dam break case study. Water 20168, 545. [Google Scholar] [CrossRef]
  41. Ghaderi, A.; Daneshfaraz, R.; Abbasi, S.; Abraham, J. Numerical analysis of the hydraulic characteristics of modified labyrinth weirs. Int. J. Energy Water Resour. 20204, 425–436. [Google Scholar] [CrossRef]
  42. Alfonsi, G. Reynolds-averaged Navier–Stokes equations for turbulence modeling. Appl. Mech. Rev. 200962. [Google Scholar] [CrossRef]
  43. Abbasi, S.; Fatemi, S.; Ghaderi, A.; Di Francesco, S. The Effect of Geometric Parameters of the Antivortex on a Triangular Labyrinth Side Weir. Water 202113, 14. [Google Scholar] [CrossRef]
  44. Celik, I.B.; Ghia, U.; Roache, P.J. Procedure for estimation and reporting of uncertainty due to discretization in CFD applications. J. Fluids Eng. 2008130, 0780011–0780013. [Google Scholar]
  45. Khan, M.I.; Simons, R.R.; Grass, A.J. Influence of cavity flow regimes on turbulence diffusion coefficient. J. Vis. 20069, 57–68. [Google Scholar] [CrossRef]
  46. Javanappa, S.K.; Narasimhamurthy, V.D. DNS of plane Couette flow with surface roughness. Int. J. Adv. Eng. Sci. Appl. Math. 2020, 1–13. [Google Scholar] [CrossRef]
  47. Nasrabadi, M.; Omid, M.H.; Farhoudi, J. Submerged hydraulic jump with sediment-laden flow. Int. J. Sediment Res. 201227, 100–111. [Google Scholar] [CrossRef]
  48. Pourabdollah, N.; Heidarpour, M.; Abedi Koupai, J. Characteristics of free and submerged hydraulic jumps in different stilling basins. In Water Management; Thomas Telford Ltd.: London, UK, 2019; pp. 1–11. [Google Scholar]
  49. Rajaratnam, N. Turbulent Jets; Elsevier Science: Amsterdam, The Netherlands, 1976. [Google Scholar]
  50. Aristodemo, F.; Marrone, S.; Federico, I. SPH modeling of plane jets into water bodies through an inflow/outflow algorithm. Ocean Eng. 2015105, 160–175. [Google Scholar] [CrossRef]
  51. Shekari, Y.; Javan, M.; Eghbalzadeh, A. Three-dimensional numerical study of submerged hydraulic jumps. Arab. J. Sci. Eng. 201439, 6969–6981. [Google Scholar] [CrossRef]
  52. Khan, A.A.; Steffler, P.M. Physically based hydraulic jump model for depth-averaged computations. J. Hydraul. Eng. 1996122, 540–548. [Google Scholar] [CrossRef]
  53. De Dios, M.; Bombardelli, F.A.; García, C.M.; Liscia, S.O.; Lopardo, R.A.; Parravicini, J.A. Experimental characterization of three-dimensional flow vortical structures in submerged hydraulic jumps. J. Hydro-Environ. Res. 201715, 1–12. [Google Scholar] [CrossRef]
Publisher’s Note: MDPI stays neutral with regard to jurisdictional claims in published maps and institutional affiliations.
A photo of HeMOSU-1.

FLOW-3D를 이용한 해상 자켓구조물 주변의 세굴 수치모의 실험

Numerical Simulation Test of Scour around Offshore Jacket Structure using FLOW-3D

J Korean Soc Coast Ocean Eng. 2015;27(6):373-381Publication date (electronic) : 2015 December 31doi : https://doi.org/10.9765/KSCOE.2015.27.6.373Dong Hui Ko*Shin Taek Jeong,**Nam Sun Oh****Hae Poong Engineering Inc.**Department of Civil and Environmental Engineering, Wonkwang University***Ocean·Plant Construction Engineering, Mokpo Maritime National University
고동휘*, 정신택,**, 오남선***

*(주)해풍기술**원광대학교 토목환경공학과***목포해양대학교 해양·플랜트건설공학과

Abstract

해상풍력 기기, 해상 플랫폼과 같은 구조물이 해상에서 빈번하게 설치되면서 세굴에 관한 영향도 중요시되고 있다. 이러한 세굴 영향을 검토하기 위해 세굴 수치모의 실험을 수행한다. 일반적으로 수치모의 조건은 일방향 흐름에 대해서만 검토가 이뤄지고 있으며 서해안과 같은 왕복성 조류 흐름에 대해서는 검토되지 않는다. 본 연구에서는 서해안에 설치된 HeMOSU-1호 해상 자켓구조물 주변에서 발생하는 세굴 현상을 FLOW-3D를 이용하여 수치모의하였다. 해석 조건으로는 일방향 흐름과 조석현상을 고려한 왕복성 흐름을 고려하였으며, 이를 현장 관측값과 비교하였다. 10,000초 동안의 수치모의 결과, 일방향의 흐름 조건에서는 1.32 m의 최대 세굴심이 발생하였으며, 양방향 흐름 조건에서는 1.44 m의 최대 세굴심이 발생하였다. 한편, 현장 관측값의 경우 약 1.5~2.0 m의 세굴심이 발생하여 양방향의 흐름에 대한 해석 결과와 근사한 값을 보였다.

Keywords 세굴일방향 흐름왕복성 조류 흐름해상 자켓구조물FLOW-3D최대 세굴심, scouruni-directional flowbi-directional tidal current flowoffshore jacket substructureFlow-3Dmaximum scour depth

As offshore structures such as offshore wind and offshore platforms have been installed frequently in ocean, scour effects are considered important. To test the scour effect, numerical simulation of scour has been carried out. However, the test was usually conducted under the uni-directional flow without bi-directional current flow in western sea of Korea. Thus, in this paper, numerical simulations of scour around offshore jacket substructure of HeMOSU-1 installed in western sea of Korea are conducted using FLOW-3D. The conditions are uni-directional and bi-directional flow considering tidal current. And these results are compared to measured data. The analysis results for 10,000 sec show that under uni-directional conditions, maximum scour depth was about 1.32 m and under bi-directional conditions, about 1.44 m maximum scour depth occurred around the structure. Meanwhile, about 1.5~2.0 m scour depths occurred in field observation and the result of field test is similar to result under bi-directional conditions.

1. 서 론

최근 해상풍력기기, 해상플랫폼과 같은 해상구조물 설치가 빈번해지면서 해상구조물의 안정성을 저하시키는 요인에 대한 대응 연구가 필요하다. 특히 해상에서의 구조물 설치는 육상과 달리 수력학적 하중이 작용하게 되기 때문에 파랑에 의한 구조물과의 진동, 세굴 현상에 대하여 철저한 사전 검토가 요구된다. 특히, 해상 기초에서 발생하는 세굴은 조류 및 파랑 등 유체 흐름과 구조물 사이의 상호작용으로 인해 해저 입자가 유실되는 현상으로 정의할 수 있으며 해상 외력 조건에 포함되어 설계시 고려하도록 제안하고 있다(IEC, 2009).구조물을 해상에 설치하게 되면 구조물이 흐름을 방해하는 장애요인으로 작용하여 구조물 주위에 부분적으로 더 빠른 유속이 발생하게 된다. 이러한 유속 변화는 압력 분포 변화에 기인하게 되어 해양구조물 주위에 아래로 흐르는 유속(downflow), 말굽형 와류(horseshoe vortex) 그리고 후류 와류(wake vortex)가 나타난다. 결국, 유속과 흐름의 변화를 야기하고 하상전단응력과 유사이동 능력을 증가시켜 해저 입자를 유실시키며 구조물의 안정성을 위협하는 요인으로 작용하게 된다. 이러한 세굴 현상이 계속 진행되면 해상풍력 지지구조물 기초의 지지력이 감소하게 될 뿐만 아니라 지지면의 유실로 상부반력 작용에 편심을 유발하여 기초의 전도를 초래한다. 또한 세굴에 의한 기초의 부등 침하가 크게 발생하면 상부 해상풍력 지지구조물에 보다 큰 단면력이 작용하므로 세굴에 의한 붕괴가 발생할 수 있다. 이처럼 세굴은 기초지지구조물을 붕괴하고, 침하와 얕은 기초의 변형을 초래하며, 구조물의 동적 성능을 변화시키기 때문에 설계 및 시공 유지관리시 사전에 세굴심도 산정, 세굴 완화 대책 등을 고려하여야 한다.또한 각종 설계 기준서에서는 세굴에 대해 다양하게 제시하고 있다. IEC(2009)ABS(2013)BSH(2007)MMAF(2005)에서는 세굴에 대한 영향을 검토할 것을 주문하지만 심도 산정 등 세굴에 대한 구체적인 내용은 언급하지 않고 전반적인 내용만 수록하고 있다. 그러나 DNV(2010)CEM(2006)에서는 경험 공식을 이용한 세굴 심도 산정 등 구체적인 내용을 광범위하게 수록하고 있어 세굴에 대한 영향 검토시 활용가능하다. 그 외의 기준서에서는 수치 모델 등을 통한 세굴 검토를 주문하고 있어 사용자들이 직접 판단하도록 제안하고 있다.그러나 세굴은 유속, 수심, 구조물 폭, 형상, 해저입자 등에 의해 결정되기 때문에 세굴의 영향 정도를 정확하게 예측하기란 쉽지 않지만 수리 모형 실험 또는 CFD(Computational Fluid Dynamics)를 이용한 수치 해석을 통해 지반 침식 및 퇴적으로 인한 지형변화를 예측할 수 있다. 한편, 침식과 퇴적 등 구조물 설치로 인한 해저 지형 변화를 예측하는 모델은 다양하지만, 본 연구에서는 Flowscience의 3차원 유동해석모델인 Flow-3D 모델을 사용하였다.해상 구조물은 목적에 따라 비교적 수심이 낮은 지역에 설치가 용이하다. 국내의 경우, 서남해안과 같이 비교적 연안역이 넓고 수심이 낮은 지역에 구조물을 설치하는 것이 비용 및 유지관리 측면에서 유리할 수 있다. 그러나 국내 서남해안 지역은 왕복성 흐름, 즉 조류가 발생하는 지역으로 흐름의 방향이 시간에 따라 변화하게 된다. 따라서, 세굴 수치 모의시 이러한 왕복성 흐름을 고려해야한다. 그러나 대부분의 수치 모델 적용시 조류가 우세한 지역에서도 일방향의 흐름에 대해서만 검토하며 왕복성 흐름에 의한 지층의 침식과 퇴적작용으로 인해 발생하는 해저 입자의 상호 보충 효과는 배제되게 된다. 또한 이로 인해 수치모델 결과에 많은 의구심이 발생하게 되며 현실성이 결여된 해석으로 보여질 수 있다. 이러한 왕복흐름의 영향을 검토하기 위해 Kim and Gang(2011)은 조류의 왕복류 흐름을 고려하여 지반의 수리 저항 성능 실험을 수행하였으며, 양방향이 일방향 흐름보다 세굴이 크게 발생하는 것을 발표하였다. 또한 Kim et al.(2012)은 흐름의 입사각에 따른 수리저항 실험을 수행하였으며 입사각이 커짐에 따라 세굴률이 증가하는 것으로 나타났다.본 연구에서는 단일방향 고정유속 그리고 양방향 변동유속조건에서 발생하는 지형 변화와 세굴 현상을 수치 모의하였으며, 이러한 비선형성 흐름변화에 따른 세굴 영향 정도를 검토하였다. 더불어 현장 관측 자료와의 비교를 통해 서남해안과 같은 왕복성 흐름이 발생하는 지역에서의 세굴 예측시 적절한 모델 수립 방안을 제안하고자 한다.

2. 수치해석 모형

본 연구에서는 Autodesk의 3D max 프로그램을 이용하여 지지구조물 형상을 제작하였으며, 수치해석은 미국 Flowscience가 개발한 범용 유동해석 프로그램인 FLOW-3D(Ver. 11.0.4.5)를 사용하였다. 좌표계는 직교 좌표계를 사용하였으며 복잡한 3차원 형상의 표현을 위하여 FAVOR 기법(Fractional Area/Volume Obstacle Representation Method)을 사용하였다. 또한 유한차분법에 FAVOR 기법을 도입한 유한체적법의 접근법을 사용하였으며 직교좌표계 에서 비압축성 유체의 3차원 흐름을 해석하기 위한 지배방정식으로는 연속방정식과 운동방정식이 사용되었다. 난류모형으로는 RNG(renormalized group)모델을 사용하였다.

2.1 FLOW-3D의 지배방정식

수식은 MathML 표현문제로 본 문서의 하단부의 원문바로가기 링크를 통해 원문을 참고하시기 바랍니다.

2.1.1 연속방정식

직교좌표계 (x,y,z)에서 비압축성 유체는 압축성 유체의 연속방정식에서 유도될 수 있으며 다음 식 (1)과 같다.

(1)

∂∂x(uAx)+∂∂y(vAy)+∂∂z(wAz)=RSORρ∂∂x(uAx)+∂∂y(vAy)+∂∂z(wAz)=RSORρ
여기서, u, v, w는 (x,y,z) 방향별 유체속도, Ax, Ay, Az는 각 방향별 유체 흐름을 위해 확보된 면적비 (Area fraction), ρ는 유체 밀도, RSOR은 질량생성/소멸(Mass source/sink)항이다.

2.1.2 운동방정식

본 모형은 3차원 난류모형이므로 각각의 방향에 따른 운동량 방정식은 다음 식(2)~(4)와 같다.

(2)

∂u∂t+1VF(uAx∂u∂x+vAy∂u∂y+wAz∂u∂z)   =−1ρ∂p∂x+Gx+fx−bx−RSORρVFu∂u∂t+1VF(uAx∂u∂x+vAy∂u∂y+wAz∂u∂z)   =−1ρ∂p∂x+Gx+fx−bx−RSORρVFu

(3)

∂v∂t+1VF(uAx∂v∂x+vAy∂v∂y+wAz∂v∂z)   =−1ρ∂p∂y+Gy+fy−by−RSORρVFv∂v∂t+1VF(uAx∂v∂x+vAy∂v∂y+wAz∂v∂z)   =−1ρ∂p∂y+Gy+fy−by−RSORρVFv

(4)

∂w∂t+1VF(uAx∂w∂x+vAy∂w∂y+wAz∂w∂z)   =−1ρ∂p∂z+Gz+fz−bz−RSORρVFw∂w∂t+1VF(uAx∂w∂x+vAy∂w∂y+wAz∂w∂z)   =−1ρ∂p∂z+Gz+fz−bz−RSORρVFw여기서, RSOR은 질량생성/소멸(Mass source/sink)항, VF는 체적비 (Volume fraction), p는 압력, Gx, Gy, Gz는 방향별 체적력항, fx, fy, fz는 방향별 점성력항, bx, by, bz는 다공질 매체에서 방향별 흐름 손실이다.그리고 점성계수 µ에 대하여 점성력항은 다음 식 (5)~(7)과 같다.

(5)

ρVffx=wsx−{∂∂x(Axτxx)+R∂∂y(Ayτxy)+∂∂z(Azτxz)+ζx(Axτxx−Ayτyy)}ρVffx=wsx−{∂∂x(Axτxx)+R∂∂y(Ayτxy)+∂∂z(Azτxz)+ζx(Axτxx−Ayτyy)}

(6)

ρVffy=wsy−{∂∂x(Axτxy)+R∂∂y(Ayτyy)+∂∂z(Azτyz)+ζx(Axτxx−Ayτxy)}ρVffy=wsy−{∂∂x(Axτxy)+R∂∂y(Ayτyy)+∂∂z(Azτyz)+ζx(Axτxx−Ayτxy)}

(7)

ρVffz=wsz−{∂∂x(Axτxz)+R∂∂y(Ayτyz)+∂∂z(Azτzz)+ζx(Axτzz)}ρVffz=wsz−{∂∂x(Axτxz)+R∂∂y(Ayτyz)+∂∂z(Azτzz)+ζx(Axτzz)}여기서, wsx, wsy, wsz는 벽전단응력이며, 벽전단응력은 벽 근처에서 벽 법칙 (law of the wall)을 따르며, 식 (8)~(13)에 의해 표현되어진다.

(8)

τxx=−2μ{∂u∂x−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}τxx=−2μ{∂u∂x−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}

(9)

τyy=−2μ{R∂v∂y+ζux−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}τyy=−2μ{R∂v∂y+ζux−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}

(10)

τzz=−2μ{R∂w∂y−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}τzz=−2μ{R∂w∂y−13(∂u∂x+R∂v∂y+∂w∂z+ζux)}

(11)

τxy=−μ{∂v∂x+R∂u∂y−ζvx}τxy=−μ{∂v∂x+R∂u∂y−ζvx}

(12)

τxz=−μ{∂u∂y+∂w∂x}τxz=−μ{∂u∂y+∂w∂x}

(13)

τyz=−μ{∂v∂z+R∂w∂y}τyz=−μ{∂v∂z+R∂w∂y}

2.1.3 Sediment scour model

Flow-3D 모델에서 사용하는 sediment scour model은 해저입자의 특성에 따라 해저 입자의 침식, 이송, 전단과 흐름 변화로 인한 퇴적물의 교란 그리고 하상 이동을 계산한다.

2.1.3.1 The critical Shields parameter

무차원 한계소류력(the dimensionless critical Shields parameter)은 Soulsby-Whitehouse 식에 의해 다음 식 (14)와 같이 나타낼 수 있다(Soulsby, 1997).

(14)

θcr,i=0.31+1.2R∗i+0.055[1−exp(−0.02R∗i)]θcr,i=0.31+1.2Ri*+0.055[1−exp(−0.02Ri*)]여기서 무차원 상수, R∗iRi*는 다음 식 (15)와 같다.

(15)

R∗i=ds,i0.1(ρs,i−ρf)ρf∥g∥ds,i−−−−−−−−−−−−−−−−−−−√μfRi*=ds,i0.1(ρs,i−ρf)ρf‖g‖ds,iμf여기서 ρs, i는 해저 입자의 밀도, ρf는 유체 밀도, ds, i는 해저입자 직경, g는 중력가속도이다.한편, 안식각에 따라 한계소류력은 다음 식 (16)과 같이 표현될 수 있다.

(16)

θ′cr,i=θcr,icosψsinβ+cos2βtan2ψi−sin2ψsin2β−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−√tanψiθcr,i′=θcr,icosψsinβ+cos2βtan2ψi−sin2ψsin2βtanψi여기서, β는 하상 경사각, ψi는 해저입자의 안식각, ψ는 유체와 해저경사의 사잇각이다.또한 local Shields number는 국부 전단응력, τ에 기초하여 다음 식 (17)과 같이 계산할 수 있다.

(17)

θi=τ∥g∥ds,i(ρs,i−ρf)θi=τ‖g‖ds,i(ρs,i−ρf)여기서, ||g||g 는 중력 벡터의 크기이며, τ는 식 (8)~(13)의 벽 법칙을 이용하여 계산할 수 있다.

2.1.3.2 동반이행(Entrainment)과 퇴적

다음 식은 해저 지반과 부유사 사이의 교란을 나타내는 동반이행과 퇴적 현상을 계산한다. 해저입자의 동반이행 속도의 계산식은 다음 식 (18)과 같으며 부유사로 전환되는 해저의 양을 계산한다.

(18)

ulift,i=αinsd0.3∗(θi−θ′cr,i)1.5∥g∥ds,i(ρs,i−ρf)ρf−−−−−−−−−−−−−−√ulift,i=αinsd*0.3(θi−θcr,i′)1.5‖g‖ds,i(ρs,i−ρf)ρf여기서, αi는 동반이행 매개변수이며, ns는 the packed bed interface에서의 법선벡터, µ는 유체의 동점성계수 그리고 d*은 무차원 입자 직경으로 다음 식 (19)와 같다.

(19)

d∗=ds,i[ρf(ρs,i−ρf)∥g∥μ2]1/3d*=ds,i[ρf(ρs,i−ρf)‖g‖μ2]1/3또한 퇴적 모델에서 사용하는 침강 속도 식은 다음 식 (20)같이 나타낼 수 있다.

(20)

usettling,i=νfds,i[(10.362+1.049d3∗)0.5−10.36]usettling,i=νfds,i[(10.362+1.049d*3)0.5−10.36]여기서, νf는 유체의 운동점성계수이다.

2.1.3.3 하상이동 모델(Bedload transport)

하상이동 모델은 해저면에 대한 단위 폭당 침전물의 체적흐름을 예측하는데 사용되며 다음 식 (21)과 같이 표현되어진다.

(21)

Φi=βi(θi−θ′cr,i)1.5Φi=βi(θi−θcr,i′)1.5여기서 Φi는 무차원 하상이동률이며 βi는 일반적으로 8.0의 값을 사용한다(van Rijn, 1984).단위 폭당 체적 하상이동률, qi는 다음 식 (22)와 같이 나타낼 수 있다.

(22)

qb,i=fb,i Φi[∥g∥(ρs,i−ρfρf)d3s,i]1/2qb,i=fb,i Φi[‖g‖(ρs,i−ρfρf)ds,i3]1/2여기서, fb, i는 해저층의 입자별 체적률이다.또한 하상이동 속도를 계산하기 위해 다음 식 (23)에 의해 해저면층 두께를 계산할 수 있다.

(23)

δi=0.3ds,id0.7∗(θiθ′cr,i−1)0.5δi=0.3ds,id*0.7(θiθcr,i′−1)0.5그리고 하상이동 속도 식은 다음 식 (24)와 같이 계산되어진다.

(24)

ubedload,i=qb,iδifb,iubedload,i=qb,iδifb,i

2.2 모델 구성 및 해역 조건

2.2.1 해역 조건 및 적용 구조물

본 수치해석은 위도와 안마도 사이의 해양 조건을 적용하였으며 지점은 Fig. 1과 같다.

jkscoe-27-6-373f1.gifFig. 1.Iso-water depth contour map in western sea of Korea.

본 해석 대상 해역은 서해안의 조석 현상이 뚜렷한 지역으로 조류 흐름이 지배적이며 위도의 조화분석의 결과를 보면 조석형태수가 0.21로서 반일주조 형태를 취한다. 또한 북동류의 창조류와 남서류의 낙조류의 특성을 보이며 조류의 크기는 대상 영역에서 0.7~1 m/s의 최강유속 분포를 보이는 것으로 발표된 바 있다. 또한 대상 해역의 시추조사 결과를 바탕으로 해저조건은 0.0353 mm 로 설정하였고(KORDI, 2011), 수위는 등수심도를 바탕으로 15 m로 하였다.한편, 풍황자원 분석을 통한 단지 세부설계 기초자료 제공, 유속, 조류 등 해양 환경변화 계측을 통한 환경영향평가 기초자료 제공을 목적으로 Fig. 2와 같이 해상기상탑(HeMOSU-1호)을 설치하여 운영하고 있다. HeMOSU-1호는 평균해수면 기준 100 m 높이이며, 중량은 100 톤의 자켓구조물로 2010년 설치되었다. 본 연구에서는 HeMOSU-1호의 제원을 활용하여 수치 모의하였으며, 2013년 7월(설치 후 약 3년 경과) 현장 관측을 수행하였다.

jkscoe-27-6-373f2.gifFig. 2.A photo of HeMOSU-1.

2.2.2 모델 구성

본 연구에서는 왕복성 조류의 영향을 살펴보기 위해 2 case에 대하여 해석하였다. 먼저, Case 1은 1 m/s의 고정 유속을 가진 일방향 흐름에 대한 해석이며, Case 2는 -1~1 m/s의 유속분포를 가진 양방향 흐름에 대한 해석이다. 여기서 (-)부호는 방향을 의미한다. Fig. 3은 시간대별 유속 분포를 나타낸 것이다.

jkscoe-27-6-373f3.gifFig. 3.Comparison of current speed conditions.

2.2.3 구조물 형상 및 격자

HeMOSU-1호 기상 타워 자켓 구조물 형상은 Fig. 4, 격자 정보는 Table 1과 같으며, 본 연구에서는 총 2,883,000 개의 직교 가변 격자체계를 구성하였다.

jkscoe-27-6-373f4.gifFig. 4.3 Dimensional plot of jacket structure.
Table 1.

Grid information of jacket structure

Xmin/Xmax(m)Ymin/Ymax(m)Zmin/Zmax(m)No. of x gridNo. of y gridNo. of z grid
−100/100−40/40−9/2031015560
Download Table

한편, 계산영역의 격자 형상은 Fig. 5와 같다.

jkscoe-27-6-373f5.gifFig. 5.3 dimensional grid of jacket structure.

2.3 계산 조건

계산영역의 경계 조건으로, Case 1의 경우, 유입부는 유속 조건을 주었으며 유출부는 outflow 조건을 적용하였다. 그리고 Case 2의 경우, 왕복성 흐름을 표현하기 위해 유입부와 유출부 조건을 유속 조건으로 설정하였다. 또한 2가지 경우 모두 상부는 자유수면을 표현하기 위해 pressure로 하였으며 하부는 지반 조건의 특성을 가진 wall 조건을 적용하였다. 양측면은 Symmetry 조건으로 대칭면으로 정의하여 대칭면에 수직한 방향의 에너지와 질량의 유출입이 없고 대칭면에 평행한 방향의 유동저항이 없는 경우로 조건을 설정하였다. 본 연구에서 케이스별 입력 조건을 다음 Table 2에 정리하였다.

Table 2.

Basic information of two scour simulation tests

CaseStructure typeVelocityDirectionAnalysis time
Case 1Jacket1 m/sUnidirectional10,000 sec
Case 2−1~1 m/sBidirectional
Download Table

FLOW-3D는 자유표면을 가진 유동장의 계산에서 정상상태 해석이 불가능하므로 비정상유동 난류해석을 수행하게 되는데 정지 상태의 조건은 조위를 설정하였다. 또한 유속의 초기 흐름은 난류상태의 비정상흐름이 되므로 본 해석에서는 정상상태의 해석 수행을 위해 1,000초의 유동 해석을 수행하였으며 그 후에 10,000초의 sediment scour 모델을 수행하였다. 해수의 밀도는 1,025 kg/m3의 점성유체로 설정하였으며 RNG(renormalized group) 난류 모델을 적용하였다.Go to : Goto

3. 수치모형 실험 결과

3.1 Case 1

본 케이스에서는 1 m/s의 유속을 가진 흐름이 구조물 주변을 흐를 때, 발생하는 세굴에 대해서 수치 모의하였다. Fig. 6은 X-Z 평면의 유속 분포도이고 Fig. 7은 X-Y 평면의 유속 분포이다. 구조물 주변에서 약간의 유속 변화가 발생했지만 전체적으로 1 m/s의 정상 유동 상태를 띄고 있다.

jkscoe-27-6-373f6.gifFig. 6.Current speed distribution in computational domain of case 1 at t = 10,000 sec (X–Z plane).
jkscoe-27-6-373f7.gifFig. 7.Current speed distribution in computational domain of case 1 at t = 10,000 sec (X–Y plane).

이러한 흐름과 구조물과의 상호 작용에 의한 세굴 현상이 발생되며 Fig. 8에 구조물 주변 지형 변화를 나타내었다. 유속이 발생하는 구조물의 전면부는 대체로 침식이 일어나 해저지반이 초기 상태보다 낮아진 것을 확인할 수 있으며, 또한 전면부의 지반이 유실되어 구조물 후면부에 최대 0.13 m까지 퇴적된 것을 확인할 수 있다.

jkscoe-27-6-373f8.gifFig. 8.Sea-bed elevation change of case 1 at t = 10,000 sec.

일방향 흐름인 Case 1의 경우에는 Fig. 9와 같이 10,000초 후 구조물 주변에 최대 1.32 m의 세굴이 발생하는 것으로 나타났다. 또한 구조물 뒤쪽으로는 퇴적이 일어났으며, 구조물 전면부에는 침식작용이 일어나고 있다.

jkscoe-27-6-373f9.gifFig. 9.Scour phenomenon around jacket substructure(Case 1).

3.2 Case 2

서해안은 조석현상으로 인해 왕복성 조류 흐름이 나타나고 있으며 대상해역은 -1~1 m/s의 유속분포를 가지고 있다. 본 연구에서는 이러한 특성을 고려한 왕복성 흐름에 대해서 수치모의하였다.다음 Fig. 10은 X-Z 평면의 유속 분포도이며 Fig. 11은 X-Y 평면의 유속 분포도이다.

jkscoe-27-6-373f10.gifFig. 10.Current speed distribution in computational domain of case 2 at t = 10,000 sec (X–Z plane).
jkscoe-27-6-373f11.gifFig. 11.Current speed distribution in computational domain of case 2 at t = 10,000 sec (X–Y plane).

양방향 흐름인 Case 2의 경우에는 Fig. 12와 같이 10,000초후 구조물 주변에 최대 1.44 m의 세굴이 발생하는 것으로 나타났다. 특히 구조물 내부에 조류 흐름 방향으로 침식 작용이 일어나고 있는 것으로 나타났다.

jkscoe-27-6-373f12.gifFig. 12.Sea-bed elevation change of case 2 at t = 10,000 sec.

Fig. 13은 3차원 수치해석 모의 결과이다.

jkscoe-27-6-373f13.gifFig. 13.Scour phenomenon around jacket substructure(Case 2).

3.3 현장 관측

본 연구에서는 수치모의 실험의 검증을 위해 HeMOSU-1호 기상 타워를 대상으로 하여 2013년 7월 1일 수심 측량을 실시하였다.HeMOSU-1호 주변의 수심측량은 Knudsen sounder 1620과 미국 Trimble사의 DGPS를 이용하여 실시하였다. 매 작업시 Bar-Check를 실시하고, 수중 음파속도는 1,500 m/s로 결정하여 조위 보정을 통해 수심을 측량하였다. 측량선의 해상위치자료는 DGPS를 사용하여 UTM 좌표계로 변환을 실시하였다. 한편, 수심측량은 해면이 정온할 때 실시하였으며 관측 자료의 변동성을 제거하기 위해 2013년 7월 1일 10시~13시에 걸쳐 수심 측량한 자료를 동시간대에 국립해양조사원에서 제공한 위도 자료를 활용해 조위 보정하였다. 다음 Fig. 14는 위도 조위 관측소의 현장관측시간대 조위 시계열 그래프이다.

jkscoe-27-6-373f14.gifFig. 14.Time series of tidal data at Wido (2013.7.1).

2013년 7월 1일 오전 10시부터 오후 1시에 걸쳐 수심측량한 결과를 이용하여 0.5 m 간격으로 등수심도를 작성하였으며 그 결과는 Fig. 15와 같다. 기상탑 내부 해역은 선박이 접근할 수 없기 때문에 측량을 실시하지 않고 Blanking 처리하였다.

jkscoe-27-6-373f15.gifFig. 15.Iso-depth contour map around HeMOSU-1.

대상 해역의 수심은 대부분 -15 m이나 4개의 Jacket 구조물 주변에서는 세굴이 발생하여 수심의 변화가 나타났다. 특히 L-3, L-4 주변에서 최대 1.5~2.0 m의 세굴이 발생한 것으로 보였으며, L-4 주변에서는 넓은 범위에 걸쳐 세굴이 발생하였다. 창조류는 북동, 낙조류는 남서 방향으로 흐르는 조류 방향성을 고려하였을 때, L-4 주변은 조류방향과 동일하게 세굴이 발생하고 있었으며, 보다 상세한 세굴형태는 원형 구조물 내부 방향의 세굴 심도를 측정하여 파악하여야 할 것으로 판단된다.관측결과 최대 1.5~2.0 m인 점을 고려하면 양방향 흐름을 대상으로 장기간에 걸쳐 모의실험을 진행하는 경우, 실제 현상에 더 근접하는 결과를 얻을 수 있을 것으로 사료된다.Go to : Goto

4. 결론 및 토의

본 연구에서는 자켓구조물인 해상기상탑 HeMOSU-1 주변에서 발생하는 세굴현상을 검토하기 위하여 2013년 7월 1일 현장 관측을 수행하고, FLOW-3D를 이용하여 수치모의 실험을 수행하였다. 실험 조건으로는 먼저 1 m/s의 유속을 가진 일방향 흐름과 -1~1 m/s의 흐름 분포를 가진 왕복성 흐름에 대해서 수치모의를 수행하였다. 그 결과 일방향 흐름의 경우, 10,000 초에 이르렀을 때 1.32 m, 왕복성 흐름의 경우 동일 시간에서 1.44 m의 최대 세굴심도가 발생하였다. 동일한 구조물에 대해서 현장 관측 결과는 1.5~2.0 m로 관측되어 일방향 흐름보다 왕복성 흐름의 경우 실제 현상에 더 근사한 것으로 판단되었다. 이는 일방향 흐름의 경우, Fig. 8에서 보는 바와 같이 구조물 후면에 퇴적과 함께 해저입자의 맞물림이 견고해져 해저 지반의 저항력이 커지는 현상에 기인한 것으로 판단된다. 반면 양방향 흐름의 경우, 흐름의 변화로 인해 맞물림이 약해지고 이로 인해 지반의 저항력이 일방향 흐름보다 약해져 세굴이 더 크게 발생하는 것으로 판단되었다.또한 장시간에 걸쳐 모델링을 수행하는 경우, 보다 근사한 결과를 얻을 수 있을 것을 사료되며, 신형식 기초 구조물을 개발하여 세굴을 저감할 수 있는 지 여부를 판단하는 등의 추가 연구가 필요하다.Go to : GotoInternational Electrotechnical Commission (IEC). (2009). IEC 61400-3: Wind turbines – Part 3: Design Requirements for Offshore Wind Turbines, Edition 1.0, IEC.

감사의 글

본 연구는 지식경제 기술혁신사업인 “승강식 해상플랫폼을 가진 수직 진자운동형 30kW급 파력발전기 개발(과제번호 :20133010071570)”와 첨단항만건설기술개발사업인 “해상풍력 지지구조 설계기준 및 콘크리트 지지구조물 기술 개발(과제번호:20120093)”의 일환으로 수행되었습니다.Go to : Goto

References

American Bureau of Shipping (ABS). (2013). Guide for Building and Classing Bottom-Founded Offshore Wind turbine Installations.

API RP 2A WSD. (2005). Recommended Practice for Planning, Designing and Constructing Fixed Offshore Platforms-Working Stress Design, API.

Det Norske Veritas (DNV). (2010). OS-J101 Design of Offshore Wind Turbine Structures.

Federal Maritime and Hydrographic Agency (BSH). (2007). Standard. Design of Offshore Wind Turbines.

FLOW SCIENCE. (2014). FLOW-3D User’s Manual, Version 11.0.4.5.

International Electrotechnical Commission (IEC). (2009). IEC 61400-3: Wind turbines – Part 3: Design Requirements for Offshore Wind Turbines, Edition 1.0, IEC.

International Organization for Standardization (ISO). (2007). ISO 19902: Petroleum and Natural Gas Industries – Fixed Steel Offshore Structures.

Kim, YS, Kang, GO. (2011). Experimental Study on Hydraulic Resistance of Sea Ground Considering Tidal Current Flow, Journal of Korean Society of Coastal and Ocean Engineers. 23(1):118-125 (in Korean).

Kim, YS, Han, BD, Kang, GO. (2012). Effect of Incidence Angle of Current on the Hydraulic Resistance Capacity of Clayey Soil, Journal of Korean Society of Coastal and Ocean Engineers. 24(1):26-35 (in Korean).

KORDI. (2011). BSPN64710-2275-2. An Analysis on the Marine Characteristics and Design Supporting for Offshore Wind Power Plant (in Korean).

Ministry of Maritime Affairs and Fisheries. (2005). Harbor and fishery design criteria (in Korean).

Soulsby, R. (1997). Dynamics of marine sands. Thomas Telford Publications, London.

U.S. Army Corps of Engineers. (2006). Coastal Engineering Manual, Part II : Coastal Hydrodynamics, Chapter II–2, Meteorology and Wave Climate.

van Rijn, L. (1984). Sediment transport, Part II:bed load transport, Journal of Hydraulic Engineering, 110(10):1431-1456.

Figure 1 (A) A schematic of ovarian cancer metastases involving tumor cells or clusters (yellow) shedding from a primary site and disseminating along ascitic currents of peritoneal fluid (green arrows) in the abdominal cavity. Ovarian cancer typically disseminates in four common abdomino-pelvic sites: (1) cul-de-sac (an extension of the peritoneal cavity between the rectum and back wall of the uterus); (2) right infracolic space (the apex formed by the termination of the small intestine of the small bowel mesentery at the ileocecal junction); (3) left infracolic space (superior site of the sigmoid colon); (4) Right paracolic gutter (communication between the upper and lower abdomen defined by the ascending colon and peritoneal wall). (B) The schematic of a perfusion model used to study the impact of sustained fluid flow on treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules (Top left). A side view of the perfusion model and growth of ovarian cancer nodules to a stromal bed (Top right). The photograph of a perfusion model used in the experiments (Bottom left) and depth-informed confocal imaging of ovarian cancer nodules in channels with and without carboplatin treatment (Bottom right). The perfusion model is 24 × 40 mm, with three channels that are 4 × 30 mm each and a height of 254 μm. The inlet and outlet ports of channels are 2.2 mm in diameter and positioned 5 mm from the edge of the chip. (C) A schematic of a 24-well plate model used to study the treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules under static conditions (without flow) (Top left). A side view of the static models and growth of ovarian cancer nodules on a stromal bed (Top right). Confocal imaging of 3D ovarian cancer nodules in a 24-well plate without and with carboplatin treatment (Bottom). Scale bars: 1 mm.

Flow-induced Shear Stress Confers Resistance to Carboplatin in an Adherent Three-Dimensional Model for Ovarian Cancer: A Role for EGFR-Targeted Photoimmunotherapy Informed by Physical Stress

난소암에 대한 일관된 3차원 모델에서 카보플라틴에 대한 유동에 의한 전단응력변화에 관한 연구

Abstract

A key reason for the persistently grim statistics associated with metastatic ovarian cancer is resistance to conventional agents, including platinum-based chemotherapies. A major source of treatment failure is the high degree of genetic and molecular heterogeneity, which results from significant underlying genomic instability, as well as stromal and physical cues in the microenvironment. Ovarian cancer commonly disseminates via transcoelomic routes to distant sites, which is associated with the frequent production of malignant ascites, as well as the poorest prognosis. In addition to providing a cell and protein-rich environment for cancer growth and progression, ascitic fluid also confers physical stress on tumors. An understudied area in ovarian cancer research is the impact of fluid shear stress on treatment failure. Here, we investigate the effect of fluid shear stress on response to platinum-based chemotherapy and the modulation of molecular pathways associated with aggressive disease in a perfusion model for adherent 3D ovarian cancer nodules. Resistance to carboplatin is observed under flow with a concomitant increase in the expression and activation of the epidermal growth factor receptor (EGFR) as well as downstream signaling members mitogen-activated protein kinase/extracellular signal-regulated kinase (MEK) and extracellular signal-regulated kinase (ERK). The uptake of platinum by the 3D ovarian cancer nodules was significantly higher in flow cultures compared to static cultures. A downregulation of phospho-focal adhesion kinase (p-FAK), vinculin, and phospho-paxillin was observed following carboplatin treatment in both flow and static cultures. Interestingly, low-dose anti-EGFR photoimmunotherapy (PIT), a targeted photochemical modality, was found to be equally effective in ovarian tumors grown under flow and static conditions. These findings highlight the need to further develop PIT-based combinations that target the EGFR, and sensitize ovarian cancers to chemotherapy in the context of flow-induced shear stress.

전이성 난소 암과 관련된 지속적으로 암울한 통계의 주요 이유는 백금 기반 화학 요법을 포함한 기존 약제에 대한 내성 때문입니다. 치료 실패의 주요 원인은 높은 수준의 유전적 및 분자적 이질성이며, 이는 중요한 기본 게놈 불안정성과 미세 환경의 기질 및 물리적 단서로 인해 발생합니다.

난소 암은 흔히 transcoelomic 경로를 통해 먼 부위로 전파되며, 이는 악성 복수의 빈번한 생산과 가장 나쁜 예후와 관련이 있습니다. 암 성장 및 진행을위한 세포 및 단백질이 풍부한 환경을 제공하는 것 외에도 복수 액은 종양에 물리적 스트레스를 부여합니다. 난소 암 연구에서 잘 연구되지 않은 분야는 유체 전단 응력이 치료 실패에 미치는 영향입니다.

여기, 우리는 백금 기반 화학 요법에 대한 반응과 부착 3D 난소 암 결절에 대한 관류 모델에서 공격적인 질병과 관련된 분자 경로의 변조에 대한 유체 전단 응력의 효과를 조사합니다.

카르보플라틴에 대한 내성은 상피 성장 인자 수용체 (EGFR)의 발현 및 활성화의 수반되는 증가 뿐만 아니라 다운 스트림 신호 구성원인 미토겐 활성화 단백질 키나제/세포 외 신호 조절 키나제 (MEK) 및 세포 외 신호 조절과 함께 관찰됩니다. 키나아제 (ERK). 3D 난소 암 결절에 의한 백금 흡수는 정적 배양에 비해 유동 배양에서 상당히 높았습니다.

포스 포-포컬 접착 키나제 (p-FAK), 빈 쿨린 및 포스 포-팍 실린의 하향 조절은 유동 및 정적 배양 모두에서 카보 플 라틴 처리 후 관찰되었습니다. 흥미롭게도, 표적 광 화학적 양식 인 저용량 항 EGFR 광 면역 요법 (PIT)은 유동 및 정적 조건에서 성장한 난소 종양에서 똑같이 효과적인 것으로 밝혀졌습니다.

이러한 발견은 EGFR을 표적으로하는 PIT 기반 조합을 추가로 개발하고 흐름 유도 전단 응력의 맥락에서 화학 요법에 난소 암을 민감하게 할 필요성을 강조합니다.

Keywords: ovarian cancer, epidermal growth factor receptor (EGFR), mitogen-activated protein kinase/extracellular signal-regulated kinase (MEK), extracellular signal-regulated kinase (ERK), chemoresistance, fluid shear stress, ascites, perfusion model, photoimmunotherapy (PIT), photodynamic therapy (PDT), carboplatin

Figure 1 (A) A schematic of ovarian cancer metastases involving tumor cells or clusters (yellow) shedding from a primary site and disseminating along ascitic currents of peritoneal fluid (green arrows) in the abdominal cavity. Ovarian cancer typically disseminates in four common abdomino-pelvic sites: (1) cul-de-sac (an extension of the peritoneal cavity between the rectum and back wall of the uterus); (2) right infracolic space (the apex formed by the termination of the small intestine of the small bowel mesentery at the ileocecal junction); (3) left infracolic space (superior site of the sigmoid colon); (4) Right paracolic gutter (communication between the upper and lower abdomen defined by the ascending colon and peritoneal wall). (B) The schematic of a perfusion model used to study the impact of sustained fluid flow on treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules (Top left). A side view of the perfusion model and growth of ovarian cancer nodules to a stromal bed (Top right). The photograph of a perfusion model used in the experiments (Bottom left) and depth-informed confocal imaging of ovarian cancer nodules in channels with and without carboplatin treatment (Bottom right). The perfusion model is 24 × 40 mm, with three channels that are 4 × 30 mm each and a height of 254 μm. The inlet and outlet ports of channels are 2.2 mm in diameter and positioned 5 mm from the edge of the chip. (C) A schematic of a 24-well plate model used to study the treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules under static conditions (without flow) (Top left). A side view of the static models and growth of ovarian cancer nodules on a stromal bed (Top right). Confocal imaging of 3D ovarian cancer nodules in a 24-well plate without and with carboplatin treatment (Bottom). Scale bars: 1 mm.
Figure 1 (A) A schematic of ovarian cancer metastases involving tumor cells or clusters (yellow) shedding from a primary site and disseminating along ascitic currents of peritoneal fluid (green arrows) in the abdominal cavity. Ovarian cancer typically disseminates in four common abdomino-pelvic sites: (1) cul-de-sac (an extension of the peritoneal cavity between the rectum and back wall of the uterus); (2) right infracolic space (the apex formed by the termination of the small intestine of the small bowel mesentery at the ileocecal junction); (3) left infracolic space (superior site of the sigmoid colon); (4) Right paracolic gutter (communication between the upper and lower abdomen defined by the ascending colon and peritoneal wall). (B) The schematic of a perfusion model used to study the impact of sustained fluid flow on treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules (Top left). A side view of the perfusion model and growth of ovarian cancer nodules to a stromal bed (Top right). The photograph of a perfusion model used in the experiments (Bottom left) and depth-informed confocal imaging of ovarian cancer nodules in channels with and without carboplatin treatment (Bottom right). The perfusion model is 24 × 40 mm, with three channels that are 4 × 30 mm each and a height of 254 μm. The inlet and outlet ports of channels are 2.2 mm in diameter and positioned 5 mm from the edge of the chip. (C) A schematic of a 24-well plate model used to study the treatment resistance and molecular features of 3D ovarian cancer nodules under static conditions (without flow) (Top left). A side view of the static models and growth of ovarian cancer nodules on a stromal bed (Top right). Confocal imaging of 3D ovarian cancer nodules in a 24-well plate without and with carboplatin treatment (Bottom). Scale bars: 1 mm.
Figure 2 (A) Geometry of the micronodule located at the center of the microchannel. The flow velocity is in the X-direction. The nodule is modeled as an ellipse with a semi-minor axis of 40 μm in the Z-direction. The semi-major axis varies from 40-100 μm in the X-direction. The section over which the fluid dynamics are studied is the middle part of the channel with dimensions 4 mm along the Y-axis and 250 μm along the Z-axis. The nodule is located at (0, 20 μm). The black dotted line shows the centerline of the largest nodule. (B) Shear stress distribution over the surface of the solid micro-nodule on the XZ-plane. (C) Shear stress distribution over the surface of the porous micro-nodule on the XZ-plane. (D) Flow flux distribution over the centerline of the porous micro-nodule on the XZ-plane. The flux enters the surface at the left and leaves at the right.
Figure 2 (A) Geometry of the micronodule located at the center of the microchannel. The flow velocity is in the X-direction. The nodule is modeled as an ellipse with a semi-minor axis of 40 μm in the Z-direction. The semi-major axis varies from 40-100 μm in the X-direction. The section over which the fluid dynamics are studied is the middle part of the channel with dimensions 4 mm along the Y-axis and 250 μm along the Z-axis. The nodule is located at (0, 20 μm). The black dotted line shows the centerline of the largest nodule. (B) Shear stress distribution over the surface of the solid micro-nodule on the XZ-plane. (C) Shear stress distribution over the surface of the porous micro-nodule on the XZ-plane. (D) Flow flux distribution over the centerline of the porous micro-nodule on the XZ-plane. The flux enters the surface at the left and leaves at the right.
Figure 3 Cytotoxic response in carboplatin-treated 3D OVCAR-5 cultures under static conditions. (A) Representative confocal images of 3D tumors treated with carboplatin (0-500 μM) for 96 h showing a dose-dependent reduction in viable tumor (calcein signal). (B) Image-based quantification of normalized viable tumor area in 3D OVCAR-5 cultures following treatment with increasing doses of carboplatin. A minimum nodule size cut-off of 2000 µm2 (clusters of ~15–20 cells) was applied to the fluorescence images for quantitative analysis of the normalized viable tumor area. (One-way ANOVA with Dunnett’s post hoc test; n.s., not significant; * p < 0.05; *** p < 0.001; N = 9) (C) Inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS)-based quantification of carboplatin uptake in static 3D OVCAR-5 tumors shows a dose-dependent increase in platinum levels, up to 9774 ± 3,052 ng/mg protein at an incubation concentration of 500 μM carboplatin. (One-way ANOVA with Dunn’s multiple comparisons test; n.s., not significant; * p < 0.05; ** p < 0.01; N = 3). Results are expressed as mean ± standard error of mean (SEM). Scale bars: 500 μm.
Figure 3 Cytotoxic response in carboplatin-treated 3D OVCAR-5 cultures under static conditions. (A) Representative confocal images of 3D tumors treated with carboplatin (0-500 μM) for 96 h showing a dose-dependent reduction in viable tumor (calcein signal). (B) Image-based quantification of normalized viable tumor area in 3D OVCAR-5 cultures following treatment with increasing doses of carboplatin. A minimum nodule size cut-off of 2000 µm2 (clusters of ~15–20 cells) was applied to the fluorescence images for quantitative analysis of the normalized viable tumor area. (One-way ANOVA with Dunnett’s post hoc test; n.s., not significant; * p < 0.05; *** p < 0.001; N = 9) (C) Inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS)-based quantification of carboplatin uptake in static 3D OVCAR-5 tumors shows a dose-dependent increase in platinum levels, up to 9774 ± 3,052 ng/mg protein at an incubation concentration of 500 μM carboplatin. (One-way ANOVA with Dunn’s multiple comparisons test; n.s., not significant; * p < 0.05; ** p < 0.01; N = 3). Results are expressed as mean ± standard error of mean (SEM). Scale bars: 500 μm.
Figure 4 flow-induced chemo-resistance
Figure 4 flow-induced chemo-resistance
Figure 5 The effects of flow-induced shear stress on 3D ovarian cancer biology. (A) Western blot analysis of OVCAR-5 tumors was performed 7 days after culture under static or flow conditions. A flow-induced increase in EGFR and p-ERK, compared to static cultures, was observed. Conversely, a reduction in p-FAK, p-Paxillin, and Vinculin was observed under flow, relative to static conditions. (B) Western blot analysis of 3D OVCAR-5 tumors was performed 11 days after culture under static or flow conditions, including 4 days of treatment with 500 µM carboplatin, and respective controls. In both static and flow 3D cultures, carboplatin treatment resulted in downregulation of EGFR, FAK, p-Paxillin, Paxillin, and Vinculin. Upregulation of p-ERK was observed after carboplatin treatment in both static and flow 3D cultures. (C) Baseline levels of EGFR activity and expression are maintained by a complex array of factors, including recycling and degradation of the activated receptor complex. Flow-induced shear stress has been shown to cause a posttranslational up-regulation of EGFR expression and activation, likely resulting from increased receptor recycling and decreased EGFR degradation. Activation of EGFR results in ERK phosphorylation to induce gene expression, ultimately leading to cell proliferation, survival, and chemoresistance. FAK and other tyrosine kinases are activated by the engagement of integrins with the ECM. Subsequent phosphorylation of paxillin by FAK not only influences the remodeling of the actin cytoskeleton, but also modulates vinculin activation to regulate mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascades, thereby stimulating pro-survival gene expression.
Figure 5 The effects of flow-induced shear stress on 3D ovarian cancer biology. (A) Western blot analysis of OVCAR-5 tumors was performed 7 days after culture under static or flow conditions. A flow-induced increase in EGFR and p-ERK, compared to static cultures, was observed. Conversely, a reduction in p-FAK, p-Paxillin, and Vinculin was observed under flow, relative to static conditions. (B) Western blot analysis of 3D OVCAR-5 tumors was performed 11 days after culture under static or flow conditions, including 4 days of treatment with 500 µM carboplatin, and respective controls. In both static and flow 3D cultures, carboplatin treatment resulted in downregulation of EGFR, FAK, p-Paxillin, Paxillin, and Vinculin. Upregulation of p-ERK was observed after carboplatin treatment in both static and flow 3D cultures. (C) Baseline levels of EGFR activity and expression are maintained by a complex array of factors, including recycling and degradation of the activated receptor complex. Flow-induced shear stress has been shown to cause a posttranslational up-regulation of EGFR expression and activation, likely resulting from increased receptor recycling and decreased EGFR degradation. Activation of EGFR results in ERK phosphorylation to induce gene expression, ultimately leading to cell proliferation, survival, and chemoresistance. FAK and other tyrosine kinases are activated by the engagement of integrins with the ECM. Subsequent phosphorylation of paxillin by FAK not only influences the remodeling of the actin cytoskeleton, but also modulates vinculin activation to regulate mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascades, thereby stimulating pro-survival gene expression.

References

  1. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2019. CA Cancer J. Clin. 2019;69:7–34. doi: 10.3322/caac.21551. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  2. Foley O.W., Rauh-Hain J.A., Del Carmen M.G. Recurrent epithelial ovarian cancer: An update on treatment. Oncology. 2013;27:288–294, 298. [PubMed] [Google Scholar]
  3. Kipps E., Tan D.S., Kaye S.B. Meeting the challenge of ascites in ovarian cancer: New avenues for therapy and research. Nat. Rev. Cancer. 2013;13:273–282. doi: 10.1038/nrc3432. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  4. Tan D.S., Agarwal R., Kaye S.B. Mechanisms of transcoelomic metastasis in ovarian cancer. Lancet Oncol. 2006;7:925–934. doi: 10.1016/S1470-2045(06)70939-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  5. Ahmed N., Stenvers K.L. Getting to know ovarian cancer ascites: Opportunities for targeted therapy-based translational research. Front. Oncol. 2013;3:256. doi: 10.3389/fonc.2013.00256. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  6. Shield K., Ackland M.L., Ahmed N., Rice G.E. Multicellular spheroids in ovarian cancer metastases: Biology and pathology. Gynecol. Oncol. 2009;113:143–148. doi: 10.1016/j.ygyno.2008.11.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  7. Naora H., Montell D.J. Ovarian cancer metastasis: Integrating insights from disparate model organisms. Nat. Rev. Cancer. 2005;5:355–366. doi: 10.1038/nrc1611. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  8. Lengyel E. Ovarian cancer development and metastasis. Am. J. Pathol. 2010;177:1053–1064. doi: 10.2353/ajpath.2010.100105. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  9. Javellana M., Hoppenot C., Lengyel E. The road to long-term survival: Surgical approach and longitudinal treatments of long-term survivors of advanced-stage serous ovarian cancer. Gynecol. Oncol. 2019;152:228–234. doi: 10.1016/j.ygyno.2018.11.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  10. Al Habyan S., Kalos C., Szymborski J., McCaffrey L. Multicellular detachment generates metastatic spheroids during intra-abdominal dissemination in epithelial ovarian cancer. Oncogene. 2018;37:5127–5135. doi: 10.1038/s41388-018-0317-x. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  11. Kim S., Kim B., Song Y.S. Ascites modulates cancer cell behavior, contributing to tumor heterogeneity in ovarian cancer. Cancer Sci. 2016;107:1173–1178. doi: 10.1111/cas.12987. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  12. Bowtell D.D., Bohm S., Ahmed A.A., Aspuria P.J., Bast R.C., Beral V., Berek J.S., Birrer M.J., Blagden S., Bookman M.A., et al. Rethinking ovarian cancer II: Reducing mortality from high-grade serous ovarian cancer. Nat. Rev. Cancer. 2015;15:668–679. doi: 10.1038/nrc4019. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  13. Hoppenot C., Eckert M.A., Tienda S.M., Lengyel E. Who are the long-term survivors of high grade serous ovarian cancer? Gynecol. Oncol. 2018;148:204–212. doi: 10.1016/j.ygyno.2017.10.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  14. Zhao Y., Cao J., Melamed A., Worley M., Gockley A., Jones D., Nia H.T., Zhang Y., Stylianopoulos T., Kumar A.S., et al. Losartan treatment enhances chemotherapy efficacy and reduces ascites in ovarian cancer models by normalizing the tumor stroma. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2019;116:2210–2219. doi: 10.1073/pnas.1818357116. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  15. Ayantunde A.A., Parsons S.L. Pattern and prognostic factors in patients with malignant ascites: A retrospective study. Ann. Oncol. 2007;18:945–949. doi: 10.1093/annonc/mdl499. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  16. Latifi A., Luwor R.B., Bilandzic M., Nazaretian S., Stenvers K., Pyman J., Zhu H., Thompson E.W., Quinn M.A., Findlay J.K., et al. Isolation and characterization of tumor cells from the ascites of ovarian cancer patients: Molecular phenotype of chemoresistant ovarian tumors. PLoS ONE. 2012;7:e46858. doi: 10.1371/journal.pone.0046858. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  17. Ahmed N., Greening D., Samardzija C., Escalona R.M., Chen M., Findlay J.K., Kannourakis G. Unique proteome signature of post-chemotherapy ovarian cancer ascites-derived tumor cells. Sci. Rep. 2016;6:30061. doi: 10.1038/srep30061. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  18. Gjorevski N., Boghaert E., Nelson C.M. Regulation of Epithelial-Mesenchymal Transition by Transmission of Mechanical Stress through Epithelial Tissues. Cancer Microenviron. 2012;5:29–38. doi: 10.1007/s12307-011-0076-5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  19. Polacheck W.J., Charest J.L., Kamm R.D. Interstitial flow influences direction of tumor cell migration through competing mechanisms. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011;108:11115–11120. doi: 10.1073/pnas.1103581108. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  20. Polacheck W.J., German A.E., Mammoto A., Ingber D.E., Kamm R.D. Mechanotransduction of fluid stresses governs 3D cell migration. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014;111:2447–2452. doi: 10.1073/pnas.1316848111. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  21. Polacheck W.J., Zervantonakis I.K., Kamm R.D. Tumor cell migration in complex microenvironments. Cell Mol. Life Sci. 2013;70:1335–1356. doi: 10.1007/s00018-012-1115-1. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  22. Swartz M.A., Lund A.W. Lymphatic and interstitial flow in the tumour microenvironment: Linking mechanobiology with immunity. Nat. Rev. Cancer. 2012;12:210–219. doi: 10.1038/nrc3186. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  23. Pisano M., Triacca V., Barbee K.A., Swartz M.A. An in vitro model of the tumor-lymphatic microenvironment with simultaneous transendothelial and luminal flows reveals mechanisms of flow enhanced invasion. Integr. Biol. 2015;7:525–533. doi: 10.1039/C5IB00085H. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  24. Follain G., Herrmann D., Harlepp S., Hyenne V., Osmani N., Warren S.C., Timpson P., Goetz J.G. Fluids and their mechanics in tumour transit: Shaping metastasis. Nat. Rev. Cancer. 2020;20:107–124. doi: 10.1038/s41568-019-0221-x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  25. Rizvi I., Gurkan U.A., Tasoglu S., Alagic N., Celli J.P., Mensah L.B., Mai Z., Demirci U., Hasan T. Flow induces epithelial-mesenchymal transition, cellular heterogeneity and biomarker modulation in 3D ovarian cancer nodules. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013;110:E1974–E1983. doi: 10.1073/pnas.1216989110. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  26. Novak C., Horst E., Mehta G. Mechanotransduction in ovarian cancer: Shearing into the unknown. APL Bioeng. 2018;2 doi: 10.1063/1.5024386. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  27. Carmignani C.P., Sugarbaker T.A., Bromley C.M., Sugarbaker P.H. Intraperitoneal cancer dissemination: Mechanisms of the patterns of spread. Cancer Metastasis Rev. 2003;22:465–472. doi: 10.1023/A:1023791229361. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  28. Sugarbaker P.H. Observations concerning cancer spread within the peritoneal cavity and concepts supporting an ordered pathophysiology. Cancer Treatment Res. 1996;82:79–100. [PubMed] [Google Scholar]
  29. Feki A., Berardi P., Bellingan G., Major A., Krause K.H., Petignat P., Zehra R., Pervaiz S., Irminger-Finger I. Dissemination of intraperitoneal ovarian cancer: Discussion of mechanisms and demonstration of lymphatic spreading in ovarian cancer model. Crit. Rev. Oncol./Hematol. 2009;72:1–9. doi: 10.1016/j.critrevonc.2008.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  30. Holm-Nielsen P. Pathogenesis of ascites in peritoneal carcinomatosis. Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1953;33:10–21. doi: 10.1111/j.1699-0463.1953.tb04805.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  31. Ahmed N., Riley C., Oliva K., Rice G., Quinn M. Ascites induces modulation of alpha6beta1 integrin and urokinase plasminogen activator receptor expression and associated functions in ovarian carcinoma. Br. J. Cancer. 2005;92:1475–1485. doi: 10.1038/sj.bjc.6602495. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  32. Woodburn J.R. The epidermal growth factor receptor and its inhibition in cancer therapy. Pharmacol. Ther. 1999;82:241–250. doi: 10.1016/S0163-7258(98)00045-X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  33. Servidei T., Riccardi A., Mozzetti S., Ferlini C., Riccardi R. Chemoresistant tumor cell lines display altered epidermal growth factor receptor and HER3 signaling and enhanced sensitivity to gefitinib. Int. J. Cancer J. Int. Cancer. 2008;123:2939–2949. doi: 10.1002/ijc.23902. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  34. Chen A.P., Zhang J., Liu H., Zhao S.P., Dai S.Z., Sun X.L. Association of EGFR expression with angiogenesis and chemoresistance in ovarian carcinoma. Zhonghua zhong liu za zhi [Chinese journal of oncology] 2009;31:48–52. [PubMed] [Google Scholar]
  35. Alper O., Bergmann-Leitner E.S., Bennett T.A., Hacker N.F., Stromberg K., Stetler-Stevenson W.G. Epidermal growth factor receptor signaling and the invasive phenotype of ovarian carcinoma cells. J. Natl. Cancer Inst. 2001;93:1375–1384. doi: 10.1093/jnci/93.18.1375. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  36. Zeineldin R., Muller C.Y., Stack M.S., Hudson L.G. Targeting the EGF receptor for ovarian cancer therapy. J. Oncol. 2010;2010:414676. doi: 10.1155/2010/414676. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  37. Alper O., De Santis M.L., Stromberg K., Hacker N.F., Cho-Chung Y.S., Salomon D.S. Anti-sense suppression of epidermal growth factor receptor expression alters cellular proliferation, cell-adhesion and tumorigenicity in ovarian cancer cells. Int. J. Cancer. 2000;88:566–574. doi: 10.1002/1097-0215(20001115)88:4<566::AID-IJC8>3.0.CO;2-D. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  38. Posadas E.M., Liel M.S., Kwitkowski V., Minasian L., Godwin A.K., Hussain M.M., Espina V., Wood B.J., Steinberg S.M., Kohn E.C. A phase II and pharmacodynamic study of gefitinib in patients with refractory or recurrent epithelial ovarian cancer. Cancer. 2007;109:1323–1330. doi: 10.1002/cncr.22545. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  39. Psyrri A., Kassar M., Yu Z., Bamias A., Weinberger P.M., Markakis S., Kowalski D., Camp R.L., Rimm D.L., Dimopoulos M.A. Effect of epidermal growth factor receptor expression level on survival in patients with epithelial ovarian cancer. Clin. Cancer Res. 2005;11:8637–8643. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-05-1436. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  40. Dimou A., Agarwal S., Anagnostou V., Viray H., Christensen S., Gould Rothberg B., Zolota V., Syrigos K., Rimm D. Standardization of epidermal growth factor receptor (EGFR) measurement by quantitative immunofluorescence and impact on antibody-based mutation detection in non-small cell lung cancer. Am. J. Pathol. 2011;179:580–589. doi: 10.1016/j.ajpath.2011.04.031. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  41. Anagnostou V.K., Welsh A.W., Giltnane J.M., Siddiqui S., Liceaga C., Gustavson M., Syrigos K.N., Reiter J.L., Rimm D.L. Analytic variability in immunohistochemistry biomarker studies. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2010;19:982–991. doi: 10.1158/1055-9965.EPI-10-0097. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  42. Del Carmen M.G., Rizvi I., Chang Y., Moor A.C., Oliva E., Sherwood M., Pogue B., Hasan T. Synergism of epidermal growth factor receptor-targeted immunotherapy with photodynamic treatment of ovarian cancer in vivo. J. Natl. Cancer Inst. 2005;97:1516–1524. doi: 10.1093/jnci/dji314. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  43. Armstrong D.K., Bundy B., Wenzel L., Huang H.Q., Baergen R., Lele S., Copeland L.J., Walker J.L., Burger R.A., Gynecologic Oncology G. Intraperitoneal cisplatin and paclitaxel in ovarian cancer. N. Engl. J. Med. 2006;354:34–43. doi: 10.1056/NEJMoa052985. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  44. Verwaal V.J., Van Ruth S., De Bree E., Van Sloothen G.W., Van Tinteren H., Boot H., Zoetmulder F.A. Randomized trial of cytoreduction and hyperthermic intraperitoneal chemotherapy versus systemic chemotherapy and palliative surgery in patients with peritoneal carcinomatosis of colorectal cancer. J. Clin. Oncol. 2003;21:3737–3743. doi: 10.1200/JCO.2003.04.187. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  45. Van Driel W.J., Koole S.N., Sikorska K., Schagen van Leeuwen J.H., Schreuder H.W.R., Hermans R.H.M., De Hingh I., Van der Velden J., Arts H.J., Massuger L., et al. Hyperthermic Intraperitoneal Chemotherapy in Ovarian Cancer. N. Engl. J. Med. 2018;378:230–240. doi: 10.1056/NEJMoa1708618. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  46. Verwaal V.J., Bruin S., Boot H., Van Slooten G., Van Tinteren H. 8-year follow-up of randomized trial: Cytoreduction and hyperthermic intraperitoneal chemotherapy versus systemic chemotherapy in patients with peritoneal carcinomatosis of colorectal cancer. Ann. Surg. Oncol. 2008;15:2426–2432. doi: 10.1245/s10434-008-9966-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  47. DeLaney T.F., Sindelar W.F., Tochner Z., Smith P.D., Friauf W.S., Thomas G., Dachowski L., Cole J.W., Steinberg S.M., Glatstein E. Phase I study of debulking surgery and photodynamic therapy for disseminated intraperitoneal tumors. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1993;25:445–457. doi: 10.1016/0360-3016(93)90066-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  48. Celli J.P., Spring B.Q., Rizvi I., Evans C.L., Samkoe K.S., Verma S., Pogue B.W., Hasan T. Imaging and photodynamic therapy: Mechanisms, monitoring, and optimization. Chem. Rev. 2010;110:2795–2838. doi: 10.1021/cr900300p. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  49. Spring B.Q., Rizvi I., Xu N., Hasan T. The role of photodynamic therapy in overcoming cancer drug resistance. Photochem. Photobiol. Sci. 2015;14:1476–1491. doi: 10.1039/C4PP00495G. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  50. Liang B.J., Pigula M., Baglo Y., Najafali D., Hasan T., Huang H.C. Breaking the Selectivity-Uptake Trade-Off of Photoimmunoconjugates with Nanoliposomal Irinotecan for Synergistic Multi-Tier Cancer Targeting. J. Nanobiotechnol. 2020;18:1. doi: 10.1186/s12951-019-0560-5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  51. Huang H.C., Rizvi I., Liu J., Anbil S., Kalra A., Lee H., Baglo Y., Paz N., Hayden D., Pereira S., et al. Photodynamic Priming Mitigates Chemotherapeutic Selection Pressures and Improves Drug Delivery. Cancer Res. 2018;78:558–571. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-17-1700. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  52. Huang H.C., Mallidi S., Liu J., Chiang C.T., Mai Z., Goldschmidt R., Ebrahim-Zadeh N., Rizvi I., Hasan T. Photodynamic Therapy Synergizes with Irinotecan to Overcome Compensatory Mechanisms and Improve Treatment Outcomes in Pancreatic Cancer. Cancer Res. 2016;76:1066–1077. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-15-0391. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  53. Cengel K.A., Glatstein E., Hahn S.M. Intraperitoneal photodynamic therapy. Cancer Treat. Res. 2007;134:493–514. [PubMed] [Google Scholar]
  54. Obaid G., Broekgaarden M., Bulin A.-L., Huang H.-C., Kuriakose J., Liu J., Hasan T. Photonanomedicine: A convergence of photodynamic therapy and nanotechnology. Nanoscale. 2016;8:12471–12503. doi: 10.1039/C5NR08691D. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  55. Ogata F., Nagaya T., Nakamura Y., Sato K., Okuyama S., Maruoka Y., Choyke P.L., Kobayashi H. Near-infrared photoimmunotherapy: A comparison of light dosing schedules. Oncotarget. 2017;8:35069–35075. doi: 10.18632/oncotarget.17047. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  56. Mitsunaga M., Ogawa M., Kosaka N., Rosenblum L.T., Choyke P.L., Kobayashi H. Cancer cell-selective in vivo near infrared photoimmunotherapy targeting specific membrane molecules. Nat. Med. 2011;17:1685–1691. doi: 10.1038/nm.2554. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  57. Inglut C.T., Baglo Y., Liang B.J., Cheema Y., Stabile J., Woodworth G.F., Huang H.-C. Systematic Evaluation of Light-Activatable Biohybrids for Anti-Glioma Photodynamic Therapy. J. Clin. Med. 2019;8:1269. doi: 10.3390/jcm8091269. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  58. Huang H.C., Pigula M., Fang Y., Hasan T. Immobilization of Photo-Immunoconjugates on Nanoparticles Leads to Enhanced Light-Activated Biological Effects. Small. 2018:e1800236. doi: 10.1002/smll.201800236. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  59. Spring B.Q., Abu-Yousif A.O., Palanisami A., Rizvi I., Zheng X., Mai Z., Anbil S., Sears R.B., Mensah L.B., Goldschmidt R., et al. Selective treatment and monitoring of disseminated cancer micrometastases in vivo using dual-function, activatable immunoconjugates. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014;111:E933–E942. doi: 10.1073/pnas.1319493111. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  60. Abu-Yousif A.O., Moor A.C., Zheng X., Savellano M.D., Yu W., Selbo P.K., Hasan T. Epidermal growth factor receptor-targeted photosensitizer selectively inhibits EGFR signaling and induces targeted phototoxicity in ovarian cancer cells. Cancer Lett. 2012;321:120–127. doi: 10.1016/j.canlet.2012.01.014. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  61. Rizvi I., Dinh T.A., Yu W., Chang Y., Sherwood M.E., Hasan T. Photoimmunotherapy and irradiance modulation reduce chemotherapy cycles and toxicity in a murine model for ovarian carcinomatosis: Perspective and results. Israel J. Chem. 2012;52:776–787. doi: 10.1002/ijch.201200016. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  62. Quirk B.J., Brandal G., Donlon S., Vera J.C., Mang T.S., Foy A.B., Lew S.M., Girotti A.W., Jogal S., LaViolette P.S., et al. Photodynamic therapy (PDT) for malignant brain tumors–where do we stand? Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2015;12:530–544. doi: 10.1016/j.pdpdt.2015.04.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  63. Eljamel M.S., Goodman C., Moseley H. ALA and Photofrin fluorescence-guided resection and repetitive PDT in glioblastoma multiforme: A single centre Phase III randomised controlled trial. Lasers Med. Sci. 2008;23:361–367. doi: 10.1007/s10103-007-0494-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  64. Varma A.K., Muller P.J. Cranial neuropathies after intracranial Photofrin-photodynamic therapy for malignant supratentorial gliomas-a report on 3 cases. Surg. Neurol. 2008;70:190–193. doi: 10.1016/j.surneu.2007.01.060. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  65. Akimoto J. Photodynamic Therapy for Malignant Brain Tumors. Neurol. Medico-Chirurgica. 2016;56:151–157. doi: 10.2176/nmc.ra.2015-0296. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  66. Kercher E.M., Nath S., Rizvi I., Spring B.Q. Cancer Cell-targeted and Activatable Photoimmunotherapy Spares T Cells in a 3D Coculture Model. Photochem. Photobiol. 2019 doi: 10.1111/php.13153. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  67. Savellano M.D., Hasan T. Targeting cells that overexpress the epidermal growth factor receptor with polyethylene glycolated BPD verteporfin photosensitizer immunoconjugates. Photochem. Photobiol. 2003;77:431–439. doi: 10.1562/0031-8655(2003)077<0431:TCTOTE>2.0.CO;2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  68. Molpus K.L., Hamblin M.R., Rizvi I., Hasan T. Intraperitoneal photoimmunotherapy of ovarian carcinoma xenografts in nude mice using charged photoimmunoconjugates. Gynecol. Oncol. 2000;76:397–404. doi: 10.1006/gyno.1999.5705. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  69. Savellano M.D., Hasan T. Photochemical targeting of epidermal growth factor receptor: A mechanistic study. Clin. Cancer Res. 2005;11:1658–1668. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-04-1902. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  70. Nath S., Saad M.A., Pigula M., Swain J.W.R., Hasan T. Photoimmunotherapy of Ovarian Cancer: A Unique Niche in the Management of Advanced Disease. Cancers. 2019;11:1887. doi: 10.3390/cancers11121887. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  71. Calibasi Kocal G., Guven S., Foygel K., Goldman A., Chen P., Sengupta S., Paulmurugan R., Baskin Y., Demirci U. Dynamic Microenvironment Induces Phenotypic Plasticity of Esophageal Cancer Cells Under Flow. Sci. Rep. 2016;6:38221. doi: 10.1038/srep38221. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  72. Tasoglu S., Gurkan U.A., Wang S., Demirci U. Manipulating biological agents and cells in micro-scale volumes for applications in medicine. Chem. Soc. Rev. 2013;42:5788–5808. doi: 10.1039/c3cs60042d. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  73. Moon S., Gurkan U.A., Blander J., Fawzi W.W., Aboud S., Mugusi F., Kuritzkes D.R., Demirci U. Enumeration of CD4+ T-cells using a portable microchip count platform in Tanzanian HIV-infected patients. PLoS ONE. 2011;6:e21409. doi: 10.1371/journal.pone.0021409. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  74. White F.M. Fluid Mechanics. McGraw-Hill; Boston, MA, USA: 2011. [Google Scholar]
  75. Luo Q., Kuang D., Zhang B., Song G. Cell stiffness determined by atomic force microscopy and its correlation with cell motility. Biochim Biophys Acta. 2016;1860:1953–1960. doi: 10.1016/j.bbagen.2016.06.010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  76. Sarntinoranont M., Rooney F., Ferrari M. Interstitial Stress and Fluid Pressure Within a Growing Tumor. Ann. Biomed. Eng. 2003;31:327–335. doi: 10.1114/1.1554923. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  77. Baxter L.T., Jain R.K. Transport of fluid and macromolecules in tumors. I. Role of interstitial pressure and convection. Microvasc. Res. 1989;37:77–104. doi: 10.1016/0026-2862(89)90074-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  78. Malik R., Khan A.P., Asangani I.A., Cieślik M., Prensner J.R., Wang X., Iyer M.K., Jiang X., Borkin D., Escara-Wilke J., et al. Targeting the MLL complex in castration-resistant prostate cancer. Nat. Med. 2015;21:344. doi: 10.1038/nm.3830. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  79. Nath S., Christian L., Tan S.Y., Ki S., Ehrlich L.I., Poenie M. Dynein Separately Partners with NDE1 and Dynactin To Orchestrate T Cell Focused Secretion. J. Immunol. 2016;197:2090–2101. doi: 10.4049/jimmunol.1600180. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  80. Celli J.P., Rizvi I., Evans C.L., Abu-Yousif A.O., Hasan T. Quantitative imaging reveals heterogeneous growth dynamics and treatment-dependent residual tumor distributions in a three-dimensional ovarian cancer model. J. Biomed. Opt. 2010;15:051603. doi: 10.1117/1.3483903. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  81. Rizvi I., Celli J.P., Evans C.L., Abu-Yousif A.O., Muzikansky A., Pogue B.W., Finkelstein D., Hasan T. Synergistic Enhancement of Carboplatin Efficacy with Photodynamic Therapy in a Three-Dimensional Model for Micrometastatic Ovarian Cancer. Cancer Res. 2010;70:9319–9328. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-10-1783. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  82. Glidden M.D., Celli J.P., Massodi I., Rizvi I., Pogue B.W., Hasan T. Image-Based Quantification of Benzoporphyrin Derivative Uptake, Localization, and Photobleaching in 3D Tumor Models, for Optimization of PDT Parameters. Theranostics. 2012;2:827–839. doi: 10.7150/thno.4334. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  83. Celli J.P., Rizvi I., Blanden A.R., Massodi I., Glidden M.D., Pogue B.W., Hasan T. An imaging-based platform for high-content, quantitative evaluation of therapeutic response in 3D tumour models. Sci. Rep. 2014;4:3751. doi: 10.1038/srep03751. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  84. Bulin A.L., Broekgaarden M., Hasan T. Comprehensive high-throughput image analysis for therapeutic efficacy of architecturally complex heterotypic organoids. Sci. Rep. 2017;7:16645. doi: 10.1038/s41598-017-16622-9. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  85. Rahmanzadeh R., Rai P., Celli J.P., Rizvi I., Baron-Luhr B., Gerdes J., Hasan T. Ki-67 as a molecular target for therapy in an in vitro three-dimensional model for ovarian cancer. Cancer Res. 2010;70:9234–9242. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-10-1190. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  86. Anbil S., Rizvi I., Celli J.P., Alagic N., Pogue B.W., Hasan T. Impact of treatment response metrics on photodynamic therapy planning and outcomes in a three-dimensional model of ovarian cancer. J. Biomed. Opt. 2013;18:098004. doi: 10.1117/1.JBO.18.9.098004. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  87. Di Pasqua A.J., Goodisman J., Dabrowiak J.C. Understanding how the platinum anticancer drug carboplatin works: From the bottle to the cell. Inorg. Chim. Acta. 2012;389:29–35. doi: 10.1016/j.ica.2012.01.028. [CrossRef] [Google Scholar]
  88. Rabik C.A., Dolan M.E. Molecular mechanisms of resistance and toxicity associated with platinating agents. Cancer Treat. Rev. 2007;33:9–23. doi: 10.1016/j.ctrv.2006.09.006. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  89. Ozols R.F. Carboplatin and paclitaxel in ovarian cancer. Semin. Oncol. 1995;22:78–83. [PubMed] [Google Scholar]
  90. Neijt J.P., Lund B. Paclitaxel with carboplatin for the treatment of ovarian cancer. Semin. Oncol. 1996;23:2–4. [PubMed] [Google Scholar]
  91. Subauste C.M., Pertz O., Adamson E.D., Turner C.E., Junger S., Hahn K.M. Vinculin modulation of paxillin–FAK interactions regulates ERK to control survival and motility. J. Cell Biol. 2004;165:371–381. doi: 10.1083/jcb.200308011. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  92. Eke I., Cordes N. Focal adhesion signaling and therapy resistance in cancer. Semin. Cancer Biol. 2015;31:65–75. [PubMed] [Google Scholar]
  93. McCubrey J.A., Steelman L.S., Chappell W.H., Abrams S.L., Wong E.W., Chang F., Lehmann B., Terrian D.M., Milella M., Tafuri A., et al. Roles of the Raf/MEK/ERK pathway in cell growth, malignant transformation and drug resistance. Biochim. Biophys. Acta. 2007;1773:1263–1284. doi: 10.1016/j.bbamcr.2006.10.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  94. Duska L.R., Hamblin M.R., Miller J.L., Hasan T. Combination photoimmunotherapy and cisplatin: Effects on human ovarian cancer ex vivo. J. Natl. Cancer Inst. 1999;91:1557–1563. doi: 10.1093/jnci/91.18.1557. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  95. Spring B., Mai Z., Rai P., Chang S., Hasan T. Theranostic nanocells for simultaneous imaging and photodynamic therapy of pancreatic cancer. Proc. SPIE. 2010;7551:755104. [Google Scholar]
  96. Kessel D., Oleinick N.L. Photodynamic therapy and cell death pathways. Methods Mol. Biol. 2010;635:35–46. doi: 10.1007/978-1-60761-697-9_3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  97. Van Dongen G.A., Visser G.W., Vrouenraets M.B. Photosensitizer-antibody conjugates for detection and therapy of cancer. Adv. Drug Deliv. Rev. 2004;56:31–52. doi: 10.1016/j.addr.2003.09.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  98. Ayhan A., Gultekin M., Taskiran C., Dursun P., Firat P., Bozdag G., Celik N.Y., Yuce K. Ascites and epithelial ovarian cancers: A reappraisal with respect to different aspects. Int. J. Gynecol. Cancer. 2007;17:68–75. doi: 10.1111/j.1525-1438.2006.00777.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  99. Shen-Gunther J., Mannel R.S. Ascites as a predictor of ovarian malignancy. Gynecol. Oncol. 2002;87:77–83. doi: 10.1006/gyno.2002.6800. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  100. Pourgholami M.H., Ataie-Kachoie P., Badar S., Morris D.L. Minocycline inhibits malignant ascites of ovarian cancer through targeting multiple signaling pathways. Gynecol. Oncol. 2013;129:113–119. doi: 10.1016/j.ygyno.2012.12.031. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  101. Shender V., Arapidi G., Butenko I., Anikanov N., Ivanova O., Govorun V. Peptidome profiling dataset of ovarian cancer and non-cancer proximal fluids: Ascites and blood sera. Data Brief. 2019;22:557–562. doi: 10.1016/j.dib.2018.12.056. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  102. Parsons S.L., Watson S.A., Steele R.J.C. Malignant ascites. Br. J. Surg. 1996;83:6–14. doi: 10.1002/bjs.1800830104. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  103. Becker G., Galandi D., Blum H.E. Malignant ascites: Systematic review and guideline for treatment. Eur. J. Cancer. 2006;42:589–597. doi: 10.1016/j.ejca.2005.11.018. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  104. Huang H., Li Y.J., Lan C.Y., Huang Q.D., Feng Y.L., Huang Y.W., Liu J.H. Clinical significance of ascites in epithelial ovarian cancer. Neoplasma. 2013;60:546–552. doi: 10.4149/neo_2013_071. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  105. Blagden S.P. Harnessing Pandemonium: The Clinical Implications of Tumor Heterogeneity in Ovarian Cancer. Front. Oncol. 2015;5:149. doi: 10.3389/fonc.2015.00149. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  106. Ahmed N., Latifi A., Riley C.B., Findlay J.K., Quinn M.A. Neuronal transcription factor Brn-3a(l) is over expressed in high-grade ovarian carcinomas and tumor cells from ascites of patients with advanced-stage ovarian cancer. J. Ovarian Res. 2010;3:17. doi: 10.1186/1757-2215-3-17. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  107. Mahmood N., Mihalcioiu C., Rabbani S.A. Multifaceted Role of the Urokinase-Type Plasminogen Activator (uPA) and Its Receptor (uPAR): Diagnostic, Prognostic, and Therapeutic Applications. Front. Oncol. 2018;8:24. doi: 10.3389/fonc.2018.00024. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  108. Jeffrey B., Udaykumar H.S., Schulze K.S. Flow fields generated by peristaltic reflex in isolated guinea pig ileum: Impact of contraction depth and shoulders. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2003;285:G907–G918. doi: 10.1152/ajpgi.00062.2003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  109. Nagy J.A., Herzberg K.T., Dvorak J.M., Dvorak H.F. Pathogenesis of malignant ascites formation: Initiating events that lead to fluid accumulation. Cancer Res. 1993;53:2631–2643. [PubMed] [Google Scholar]
  110. Ahmed N., Abubaker K., Findlay J., Quinn M. Epithelial mesenchymal transition and cancer stem cell-like phenotypes facilitate chemoresistance in recurrent ovarian cancer. Curr. Cancer Drug Targets. 2010;10:268–278. doi: 10.2174/156800910791190175. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  111. Latifi A., Abubaker K., Castrechini N., Ward A.C., Liongue C., Dobill F., Kumar J., Thompson E.W., Quinn M.A., Findlay J.K., et al. Cisplatin treatment of primary and metastatic epithelial ovarian carcinomas generates residual cells with mesenchymal stem cell-like profile. J. Cell Biochem. 2011;112:2850–2864. doi: 10.1002/jcb.23199. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  112. Chan D.W., Hui W.W., Cai P.C., Liu M.X., Yung M.M., Mak C.S., Leung T.H., Chan K.K., Ngan H.Y. Targeting GRB7/ERK/FOXM1 signaling pathway impairs aggressiveness of ovarian cancer cells. PLoS ONE. 2012;7:e52578. doi: 10.1371/journal.pone.0052578. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  113. Mebratu Y., Tesfaigzi Y. How ERK1/2 activation controls cell proliferation and cell death: Is subcellular localization the answer? Cell Cycle. 2009;8:1168–1175. doi: 10.4161/cc.8.8.8147. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  114. Zebisch A., Czernilofsky A.P., Keri G., Smigelskaite J., Sill H., Troppmair J. Signaling through RAS-RAF-MEK-ERK: From basics to bedside. Curr. Med. Chem. 2007;14:601–623. doi: 10.2174/092986707780059670. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  115. Jo H., Sipos K., Go Y.M., Law R., Rong J., McDonald J.M. Differential effect of shear stress on extracellular signal-regulated kinase and N-terminal Jun kinase in endothelial cells. Gi2- and Gbeta/gamma-dependent signaling pathways. J. Biol. Chem. 1997;272:1395–1401. doi: 10.1074/jbc.272.2.1395. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  116. Surapisitchat J., Hoefen R.J., Pi X., Yoshizumi M., Yan C., Berk B.C. Fluid shear stress inhibits TNF-alpha activation of JNK but not ERK1/2 or p38 in human umbilical vein endothelial cells: Inhibitory crosstalk among MAPK family members. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001;98:6476–6481. doi: 10.1073/pnas.101134098. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  117. Kim C.H., Jeung E.B., Yoo Y.M. Combined Fluid Shear Stress and Melatonin Enhances the ERK/Akt/mTOR Signal in Cilia-Less MC3T3-E1 Preosteoblast Cells. Int. J. Mol. Sci. 2018;19:2929. doi: 10.3390/ijms19102929. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  118. Persons D.L., Yazlovitskaya E.M., Cui W., Pelling J.C. Cisplatin-induced activation of mitogen-activated protein kinases in ovarian carcinoma cells: Inhibition of extracellular signal-regulated kinase activity increases sensitivity to cisplatin. Clin. Cancer Res. 1999;5:1007–1014. [PubMed] [Google Scholar]
  119. Hayakawa J., Ohmichi M., Kurachi H., Ikegami H., Kimura A., Matsuoka T., Jikihara H., Mercola D., Murata Y. Inhibition of extracellular signal-regulated protein kinase or c-Jun N-terminal protein kinase cascade, differentially activated by cisplatin, sensitizes human ovarian cancer cell line. J. Biol. Chem. 1999;274:31648–31654. doi: 10.1074/jbc.274.44.31648. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  120. Yeh P.Y., Chuang S.E., Yeh K.H., Song Y.C., Ea C.K., Cheng A.L. Increase of the resistance of human cervical carcinoma cells to cisplatin by inhibition of the MEK to ERK signaling pathway partly via enhancement of anticancer drug-induced NF kappa B activation. Biochem. Pharmacol. 2002;63:1423–1430. doi: 10.1016/S0006-2952(02)00908-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  121. Wang X., Martindale J.L., Holbrook N.J. Requirement for ERK activation in cisplatin-induced apoptosis. J. Biol. Chem. 2000;275:39435–39443. doi: 10.1074/jbc.M004583200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  122. Qin X., Liu C., Zhou Y., Wang G. Cisplatin induces programmed death-1-ligand 1(PD-L1) over-expression in hepatoma H22 cells via Erk /MAPK signaling pathway. Cell Mol. Biol. 2010;56:OL1366-72. doi: 10.1170/156. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  123. Basu A., Tu H. Activation of ERK during DNA damage-induced apoptosis involves protein kinase Cdelta. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2005;334:1068–1073. doi: 10.1016/j.bbrc.2005.06.199. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  124. Nowak G. Protein kinase C-alpha and ERK1/2 mediate mitochondrial dysfunction, decreases in active Na+ transport, and cisplatin-induced apoptosis in renal cells. J. Biol. Chem. 2002;277:43377–43388. doi: 10.1074/jbc.M206373200. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  125. Chaudhury A., Tan B.J., Das S., Chiu G.N. Increased ERK activation and cellular drug accumulation in the enhanced cytotoxicity of folate receptor-targeted liposomal carboplatin. Int. J. Oncol. 2012;40:703–710. doi: 10.3892/ijo.2011.1262. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  126. Lok G.T., Chan D.W., Liu V.W., Hui W.W., Leung T.H., Yao K.M., Ngan H.Y. Aberrant activation of ERK/FOXM1 signaling cascade triggers the cell migration/invasion in ovarian cancer cells. PLoS ONE. 2011;6:e23790. doi: 10.1371/journal.pone.0023790. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  127. Lafky J.M., Wilken J.A., Baron A.T., Maihle N.J. Clinical implications of the ErbB/epidermal growth factor (EGF) receptor family and its ligands in ovarian cancer. Biochim. Biophys. Acta. 2008;1785:232–265. doi: 10.1016/j.bbcan.2008.01.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  128. Secord A.A., Blessing J.A., Armstrong D.K., Rodgers W.H., Miner Z., Barnes M.N., Lewandowski G., Mannel R.S., Gynecologic Oncology G. Phase II trial of cetuximab and carboplatin in relapsed platinum-sensitive ovarian cancer and evaluation of epidermal growth factor receptor expression: A Gynecologic Oncology Group study. Gynecol. Oncol. 2008;108:493–499. doi: 10.1016/j.ygyno.2007.11.029. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  129. Bae G.-Y., Choi S.-J., Lee J.-S., Jo J., Lee J., Kim J., Cha H.-J. Loss of E-cadherin activates EGFR-MEK/ERK signaling, which promotes invasion via the ZEB1/MMP2 axis in non-small cell lung cancer. Oncotarget. 2013;4:2512. doi: 10.18632/oncotarget.1463. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  130. Pece S., Gutkind J.S. Signaling from E-cadherins to the MAPK pathway by the recruitment and activation of epidermal growth factor receptors upon cell-cell contact formation. J. Biol. Chem. 2000;275:41227–41233. doi: 10.1074/jbc.M006578200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  131. Lifschitz-Mercer B., Czernobilsky B., Feldberg E., Geiger B. Expression of the adherens junction protein vinculin in human basal and squamous cell tumors: Relationship to invasiveness and metastatic potential. Hum. Pathol. 1997;28:1230–1236. doi: 10.1016/S0046-8177(97)90195-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  132. Raz A., Geiger B. Altered organization of cell-substrate contacts and membrane-associated cytoskeleton in tumor cell variants exhibiting different metastatic capabilities. Cancer Res. 1982;42:5183–5190. [PubMed] [Google Scholar]
  133. Fukada T., Sakajiri H., Kuroda M., Kioka N., Sugimoto K. Fluid shear stress applied by orbital shaking induces MG-63 osteosarcoma cells to activate ERK in two phases through distinct signaling pathways. Biochem. Biophys. Rep. 2017;9:257–265. doi: 10.1016/j.bbrep.2017.01.004. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  134. Wu D.W., Wu T.C., Wu J.Y., Cheng Y.W., Chen Y.C., Lee M.C., Chen C.Y., Lee H. Phosphorylation of paxillin confers cisplatin resistance in non-small cell lung cancer via activating ERK-mediated Bcl-2 expression. Oncogene. 2014;33:4385–4395. doi: 10.1038/onc.2013.389. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  135. Kessel D. Apoptosis and associated phenomena as a determinants of the efficacy of photodynamic therapy. Photochem. Photobiol. Sci. 2015;14:1397–1402. doi: 10.1039/C4PP00413B. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  136. Agostinis P., Berg K., Cengel K.A., Foster T.H., Girotti A.W., Gollnick S.O., Hahn S.M., Hamblin M.R., Juzeniene A., Kessel D., et al. Photodynamic therapy of cancer: An update. CA Cancer J. Clin. 2011;61:250–281. doi: 10.3322/caac.20114. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  137. Sorrin A.J., Ruhi M.K., Ferlic N.A., Karimnia V., Polacheck W.J., Celli J.P., Huang H.C., Rizvi I. Photodynamic Therapy and the Biophysics of the Tumor Microenvironment. Photochem. Photobiol. 2020 doi: 10.1111/php.13209. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  138. Niu C.J., Fisher C., Scheffler K., Wan R., Maleki H., Liu H., Sun Y., C A.S., Birngruber R., Lilge L. Polyacrylamide gel substrates that simulate the mechanical stiffness of normal and malignant neuronal tissues increase protoporphyin IX synthesis in glioma cells. J. Biomed. Opt. 2015;20:098002. doi: 10.1117/1.JBO.20.9.098002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  139. Perentes J.Y., Wang Y., Wang X., Abdelnour E., Gonzalez M., Decosterd L., Wagnieres G., Van den Bergh H., Peters S., Ris H.B., et al. Low-Dose Vascular Photodynamic Therapy Decreases Tumor Interstitial Fluid Pressure, which Promotes Liposomal Doxorubicin Distribution in a Murine Sarcoma Metastasis Model. Transl. Oncol. 2014;7 doi: 10.1016/j.tranon.2014.04.010. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  140. Leunig M., Goetz A.E., Gamarra F., Zetterer G., Messmer K., Jain R.K. Photodynamic therapy-induced alterations in interstitial fluid pressure, volume and water content of an amelanotic melanoma in the hamster. Br. J. Cancer. 1994;69:101–103. doi: 10.1038/bjc.1994.15. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  141. Foster T.H., Murant R.S., Bryant R.G., Knox R.S., Gibson S.L., Hilf R. Oxygen consumption and diffusion effects in photodynamic therapy. Radiat Res. 1991;126:296–303. doi: 10.2307/3577919. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  142. Foster T.H., Hartley D.F., Nichols M.G., Hilf R. Fluence rate effects in photodynamic therapy of multicell tumor spheroids. Cancer Res. 1993;53:1249–1254. [PubMed] [Google Scholar]
  143. Nichols M.G., Foster T.H. Oxygen diffusion and reaction kinetics in the photodynamic therapy of multicell tumour spheroids. Phys. Med. Biol. 1994;39:2161–2181. doi: 10.1088/0031-9155/39/12/003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  144. Cavin S., Wang X., Zellweger M., Gonzalez M., Bensimon M., Wagnieres G., Krueger T., Ris H.B., Gronchi F., Perentes J.Y. Interstitial fluid pressure: A novel biomarker to monitor photo-induced drug uptake in tumor and normal tissues. Lasers Surg. Med. 2017;49:773–780. doi: 10.1002/lsm.22687. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  145. Garcia Calavia P., Chambrier I., Cook M.J., Haines A.H., Field R.A., Russell D.A. Targeted photodynamic therapy of breast cancer cells using lactose-phthalocyanine functionalized gold nanoparticles. J. Colloid Interface Sci. 2018;512:249–259. doi: 10.1016/j.jcis.2017.10.030. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  146. Kato T., Jin C.S., Ujiie H., Lee D., Fujino K., Wada H., Hu H.P., Weersink R.A., Chen J., Kaji M., et al. Nanoparticle targeted folate receptor 1-enhanced photodynamic therapy for lung cancer. Lung Cancer. 2017;113:59–68. doi: 10.1016/j.lungcan.2017.09.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  147. Sebak A.A., Gomaa I.E.O., ElMeshad A.N., AbdelKader M.H. Targeted photodynamic-induced singlet oxygen production by peptide-conjugated biodegradable nanoparticles for treatment of skin melanoma. Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2018;23:181–189. doi: 10.1016/j.pdpdt.2018.05.017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  148. Fernandes S.R.G., Fernandes R., Sarmento B., Pereira P.M.R., Tome J.P.C. Photoimmunoconjugates: Novel synthetic strategies to target and treat cancer by photodynamic therapy. Org. Biomol. Chem. 2019;17:2579–2593. doi: 10.1039/C8OB02902D. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  149. Hamblin M.R., Miller J.L., Hasan T. Effect of charge on the interaction of site-specific photoimmunoconjugates with human ovarian cancer cells. Cancer Res. 1996;56:5205–5210. [PubMed] [Google Scholar]
  150. Flont M., Jastrzebska E., Brzozka Z. Synergistic effect of the combination therapy on ovarian cancer cells under microfluidic conditions. Anal. Chim. Acta. 2020;1100:138–148. doi: 10.1016/j.aca.2019.11.047. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Advances in Nanotechnology

Advances in Nanotechnology

This article was contributed by Prof. Edward Furlani and his students from the University at Buffalo, SUNY.

Microfluidics와 nanofluidics는 나노와 나노사이의 기능을 가진 재료와 시스템을 통한 유체 흐름의 과학과 기술을 포함하는 분야입니다. 최근 몇 년 사이에 이 분야의 연구는 재료 개발과 시스템의 급속한 발전된 유체공정의 독특한 이점으로 증가해 왔습니다. Microfluidic 및 nanofluidic 시스템은 화학 반응, 유체 가열, 혼합 및 감지와 같은 순차적 또는 다중화된 공정을 포함할 수 있는 응용 분야에서 마이크로 사이즈의 유체 유동은 매우 효율적이고 반복 가능하며 신속한 처리를 가능하게 합니다. 풀 라니 (Furlani) 교수 그룹의 연구는 새로운 공정 및 장치 개발에 대한 모델링 및 시뮬레이션을 보여줍니다. 이 연구의 대부분은 뉴턴 및 비 뉴턴 유체, 열 전달, 상변화 분석, 자유표면 및 다상분석, 유체와 관련된 유체 현상을 연구하기 위해 최첨단 전산 유체역학을 강조합니다. 매체 상호작용, 다공성 매체를 통한 유동, 완전히 결합된 유체구조 및 입자, 유체 상호작용에 대해 콜로이드. 국제 나노 기술 학술 대회에서 3 편의 논문이 발표될 예정입니다. 2014년 6월 15일부터 18 일까지 워싱턴 DC의 Gaylord National Hotel 및 Convention Center에서 개최됩니다. 이들은 버팔로 대학교 (University at Buffalo)에서 진행되는 획기적인 결과를 선보입니다. 여기에서는 이러한 작품의 미리 보기와 FLOW-3D로 생성된 시뮬레이션 결과 중 일부를 제시합니다.

Analysis of Stem Cell Culture Performance in a Microcarrier Bioreactor System

Koushik Ponnuru1, Jincheng Wu1, Preeti Ashok1, Emmanuel S. Tzanakakis1,3,4,5,6 and Edward P. Furlani1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2 Dept. of Electrical Engineering, 3Dept. of Biomedical Engineering, 4New York State Center of Excellence in Bioinformatics and Life Sciences, 5Western New York Stem Cell Culture and Analysis Center, 6Genetics, Genomics and Bioinformatics, University at Buffalo, SUNY

(left) Shear stress distribution along with velocity vectors in a cross sectional plane of the bioreactor running at 60 rpm; (right) Kolmogorov length scale distribution at the same plane under the same conditions.

CFD 기반 시뮬레이션과 실험결과의 조합으로 교반 탱크의 마이크로 캐리어 생물 반응기 시스템에서 세포 배양에 대한 난류 전단응력의 영향에 대한 분석을 제시합니다. Corning’s bench-scale spinner flask의 3D 계산 모델은 최첨단 CFD 소프트웨어 인 FLOW-3D를 사용하여 제작되었습니다. 임펠러 속도, 배양액 및 입자 크기와 같은 매개변수가 마이크로 캐리어 입자에 작용되는 전단응력에 미치는 영향을 CFD 분석을 사용하여 연구하였습니다. 이것은 세포가 겪는 정확한 전단 조건을 예측하고 세포의 손상을 방지하는 최적의 작동조건을 확인하는데 사용됩니다. 또한, 다원능 마커 Oct4, Sox2 및 Nanog를 운반하는 세포의 비율을 세포 계측법 및 정량적 PCR을 사용하여 측정함으로써 hPSCs의 다능성 전단효과를 연구합니다.

Numerical Analysis of Fully-Coupled Particle-Fluid Transport and Free-Flow Magnetophoretic Sorting in Microfluidic Systems

Chenxu Liu1, Xiaozheng Xue1 and Edward P. Furlani 1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2Dept. of Electrical Engineering, University at Buffalo, SUNY

Magnetic nanoparticle chaining and rotating following an external field and causing the mixing of two different molecular concentrations.

Magnetic 입자는 생체 의학 및 임상 진단 응용을 위해 생체 재료를 선택적으로 분리 및 분류하는 마이크로 유체시스템에 점점 더 많이 사용되고 있습니다. 그러한 시스템의 합리적인 설계에 사용될 수 있는 전산모델이 도입되었습니다. 이 모델은 자기 및 유체 역학적 힘, 완전 결합 입자 – 유체 상호 작용 및 입자의 자기 조립을 유도하는 자기 쌍극자와 쌍극자의 상호 작용을 비롯한 입자 수송에 대한 지배적 메커니즘을 고려합니다. 응용 프로그램을 통해 연속흐름 분리시스템 및 회전 조립 체인을 기반으로 하는 미세 유체 혼합프로세스로 시연됩니다.

Numerical Analysis of Laser Induced Photothermal Effects using Colloidal Plasmonic Nanostructures

Ioannis H. Karampelas1, Young Hwa Kim2 and Edward P. Furlani 1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2 Dept. of Electrical Engineering, University at Buffalo, SUNY

Photothermal heat cycle of a nanocage (a=50nm, t=5nm) (perspective 1/8 view): plot of nanocage temperature vs. time, pulse duration indicated by the red arrow and dashed line and inset plots showing various phases of the thermo -fluidic cycle: (a) nanobubble formation, (b) nanobubble (maximum size), (c) nanobubble collapse, (d) cooling.

Colloidal 귀금속 (plasmonic) 나노 구조는 나노 입자 합성에서부터 바이오 이미징 (bioimaging), 의학 요법 (medical therapy)에 이르기까지 다양한 광열 (photothermal) 분야에서 점점 더 많이 사용되고 있습니다. 많은 응용분야에서, 펄스 레이저는 plasmonic 공진 주파수에서 나노 구조를 사용하며, 이는 광자의 흡수 및 고도로 국부화된 파장필드의 향상을 가져옵니다. 원격 소스로부터 효율적인 나노 스케일 가열하는 것 외에도, 합성동안 나노 입자의 구조를 조정함으로써 근적외선 스펙트럼을 통한 공진 가열파장을 조정할 수 있습니다. 우리 그룹은 nanosecond-pulsed, laser-heated colloidal metallic nanoparticles 및 열 유체 거동을 예측하는 전산모델을 개발했습니다. 이 모델은 플라즈몬 공명, 입자에서 주변 유체로의 열 전달 및 균일한 기포 핵 형성을 유도하는 유체의 위상변화에서 나노 입자 내의 에너지 전환을 시뮬레이션 하는데 사용되었습니다. nanorods, nanotori, nanorings 및 nanocages 등 다양한 nanoparticle 형상이 연구되었습니다. 이 분석은 레이저 강도, 입사 파장, 편광, 펄스 지속 시간 및 나노 입자의 방향 및 모양과 같은 공정 매개 변수가 광열 공정을 최적화하도록 조정될 수 있음을 보여줍니다. Plasmonic nanoparticles는 악성 조직의 약물 치료, 약물 전달 및 생체치료에 사용됩니다.

Advances in Nanotechnology

Advances in Nanotechnology

This article was contributed by Prof. Edward Furlani and his students from the University at Buffalo, SUNY.

 

Microfluidics와 nanofluidics는 나노와 나노사이의 기능을 가진 재료와 시스템을 통한 유체 흐름의 과학과 기술을 포함하는 분야입니다. 최근 몇 년 사이에 이 분야의 연구는 재료 개발과 시스템의 급속한 발전된 유체공정의 독특한 이점으로 증가해 왔습니다. Microfluidic 및 nanofluidic 시스템은 화학 반응, 유체 가열, 혼합 및 감지와 같은 순차적 또는 다중화된 공정을 포함할 수 있는 응용 분야에서 마이크로 사이즈의 유체 유동은 매우 효율적이고 반복 가능하며 신속한 처리를 가능하게 합니다. 풀 라니 (Furlani) 교수 그룹의 연구는 새로운 공정 및 장치 개발에 대한 모델링 및 시뮬레이션을 보여줍니다. 이 연구의 대부분은 뉴턴 및 비 뉴턴 유체, 열 전달, 상변화 분석, 자유표면 및 다상분석, 유체와 관련된 유체 현상을 연구하기 위해 최첨단 전산 유체역학을 강조합니다. 매체 상호작용, 다공성 매체를 통한 유동, 완전히 결합된 유체구조 및 입자, 유체 상호작용에 대해 콜로이드. 국제 나노 기술 학술 대회에서 3 편의 논문이 발표될 예정입니다. 2014년 6월 15일부터 18 일까지 워싱턴 DC의 Gaylord National Hotel 및 Convention Center에서 개최됩니다. 이들은 버팔로 대학교 (University at Buffalo)에서 진행되는 획기적인 결과를 선보입니다. 여기에서는 이러한 작품의 미리 보기와 FLOW-3D로 생성된 시뮬레이션 결과 중 일부를 제시합니다.

Analysis of Stem Cell Culture Performance in a Microcarrier Bioreactor System

Koushik Ponnuru1, Jincheng Wu1, Preeti Ashok1, Emmanuel S. Tzanakakis1,3,4,5,6 and Edward P. Furlani1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2 Dept. of Electrical Engineering, 3Dept. of Biomedical Engineering, 4New York State Center of Excellence in Bioinformatics and Life Sciences, 5Western New York Stem Cell Culture and Analysis Center, 6Genetics, Genomics and Bioinformatics, University at Buffalo, SUNY

(left) Shear stress distribution along with velocity vectors in a cross sectional plane of the bioreactor running at 60 rpm; (right) Kolmogorov length scale distribution at the same plane under the same conditions.

CFD 기반 시뮬레이션과 실험결과의 조합으로 교반 탱크의 마이크로 캐리어 생물 반응기 시스템에서 세포 배양에 대한 난류 전단응력의 영향에 대한 분석을 제시합니다. Corning’s bench-scale spinner flask의 3D 계산 모델은 최첨단 CFD 소프트웨어 인 FLOW-3D를 사용하여 제작되었습니다. 임펠러 속도, 배양액 및 입자 크기와 같은 매개변수가 마이크로 캐리어 입자에 작용되는 전단응력에 미치는 영향을 CFD 분석을 사용하여 연구하였습니다. 이것은 세포가 겪는 정확한 전단 조건을 예측하고 세포의 손상을 방지하는 최적의 작동조건을 확인하는데 사용됩니다. 또한, 다원능 마커 Oct4, Sox2 및 Nanog를 운반하는 세포의 비율을 세포 계측법 및 정량적 PCR을 사용하여 측정함으로써 hPSCs의 다능성 전단효과를 연구합니다.

 

Numerical Analysis of Fully-Coupled Particle-Fluid Transport and Free-Flow Magnetophoretic Sorting in Microfluidic Systems

Chenxu Liu1, Xiaozheng Xue1 and Edward P. Furlani 1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2Dept. of Electrical Engineering, University at Buffalo, SUNY

Magnetic nanoparticle chaining and rotating following an external field and causing the mixing of two different molecular concentrations.

 

Magnetic 입자는 생체 의학 및 임상 진단 응용을 위해 생체 재료를 선택적으로 분리 및 분류하는 마이크로 유체시스템에 점점 더 많이 사용되고 있습니다. 그러한 시스템의 합리적인 설계에 사용될 수 있는 전산모델이 도입되었습니다. 이 모델은 자기 및 유체 역학적 힘, 완전 결합 입자 – 유체 상호 작용 및 입자의 자기 조립을 유도하는 자기 쌍극자와 쌍극자의 상호 작용을 비롯한 입자 수송에 대한 지배적 메커니즘을 고려합니다. 응용 프로그램을 통해 연속흐름 분리시스템 및 회전 조립 체인을 기반으로 하는 미세 유체 혼합프로세스로 시연됩니다.

 

Numerical Analysis of Laser Induced Photothermal Effects using Colloidal Plasmonic Nanostructures

Ioannis H. Karampelas1, Young Hwa Kim2 and Edward P. Furlani 1,2

1Dept. of Chemical and Biological Engineering, 2 Dept. of Electrical Engineering, University at Buffalo, SUNY

 

Photothermal heat cycle of a nanocage (a=50nm, t=5nm) (perspective 1/8 view): plot of nanocage temperature vs. time, pulse duration indicated by the red arrow and dashed line and inset plots showing various phases of the thermo -fluidic cycle: (a) nanobubble formation, (b) nanobubble (maximum size), (c) nanobubble collapse, (d) cooling.

Colloidal 귀금속 (plasmonic) 나노 구조는 나노 입자 합성에서부터 바이오 이미징 (bioimaging), 의학 요법 (medical therapy)에 이르기까지 다양한 광열 (photothermal) 분야에서 점점 더 많이 사용되고 있습니다. 많은 응용분야에서, 펄스 레이저는 plasmonic 공진 주파수에서 나노 구조를 사용하며, 이는 광자의 흡수 및 고도로 국부화된 파장필드의 향상을 가져옵니다. 원격 소스로부터 효율적인 나노 스케일 가열하는 것 외에도, 합성동안 나노 입자의 구조를 조정함으로써 근적외선 스펙트럼을 통한 공진 가열파장을 조정할 수 있습니다. 우리 그룹은 nanosecond-pulsed, laser-heated colloidal metallic nanoparticles 및 열 유체 거동을 예측하는 전산모델을 개발했습니다. 이 모델은 플라즈몬 공명, 입자에서 주변 유체로의 열 전달 및 균일한 기포 핵 형성을 유도하는 유체의 위상변화에서 나노 입자 내의 에너지 전환을 시뮬레이션 하는데 사용되었습니다. nanorods, nanotori, nanorings 및 nanocages 등 다양한 nanoparticle 형상이 연구되었습니다. 이 분석은 레이저 강도, 입사 파장, 편광, 펄스 지속 시간 및 나노 입자의 방향 및 모양과 같은 공정 매개 변수가 광열 공정을 최적화하도록 조정될 수 있음을 보여줍니다. Plasmonic nanoparticles는 악성 조직의 약물 치료, 약물 전달 및 생체치료에 사용됩니다.

Water Rivers Bridge Piers

Bridge Piers

FLOW-3D의 Sediment Scour Model 은 강이나 하천에서 수리학적으로 복잡한 교각과 지형에 따라 여러가지 퇴적물들의 높이 변화를 해석할 수 있습니다. 세굴 모델은 FLOW-3D 난류 모델들로 적분하여 3차원 분석이 가능합니다. FLOW-3D의 Shallow Water Model로 더 넓은 범위의 세굴 분석이 가능합니다.

Bridge piers scour simulation using FLOW-3D

교각 주위의 세굴 해석

세굴 모델은 deposition, packing, entrainment and drift-flux 메커니즘으로 되어있습니다. FLOW-3D v11 에서는 퇴적층의 형상을 FAVOR 하여 좀 더 정확하게 bed net 높이 변화를 시각화 할 수 있습니다. 시공간적으로 침전물의 변화뿐 아니라 유체의 부유물들, 바닥/유체 계면에서의 전단응력들을 분석할 수 있습니다.

Modeling Hydraulic Control Structures

In addition to the flow rates and detail of hydraulic behaviors associated with the control gate structures and powerhouse operation, FLOW-3D‘s sediment and scour model allows users to identify regions of high scour both near the control structure and further downstream in the vicinity of the bridge piers.

Bridge Pier Simulations

The first video shows a FLOW-3D simulation of the erosion that occurs around a group of three 2.4 m diameter piers as river water flows past at 1.5 m/s. The river depth is 15.8 m and the mean sediment size was presumed to be 0.35 mm.